Literature DB >> 33445845

[Genetic characteristics and prognostic values of RAS mutations in patients with myelofibrosis].

J Y Wu1, B Li1, Y J Jia1, P H Zhang1, Z F Xu1, T J Qin1, S Q Qu1, L J Pan1, J Q Liu1, X Yan1, Y D Zhang1, J Chen1, J Y Gong1, Z J Xiao1.   

Abstract

Objective: To explore the genetic characteristics, clinical features, and prognostic values of RAS mutations in patients with myelofibrosis (MF) .
Methods: We analyzed 112-gene targeted sequencing data from 226 patients who had a diagnosis of either primary myelofibrosis (PMF) or post-polycythemia vera/post-essential thrombocythemia (post-PV MF and post-ET MF) from December 2011 to December 2019. A retrospective analysis of the genetic characteristics, clinical features, and prognosis of RAS mutations was performed.
Results: Among 266 patients diagnosed PMF or post-PV/ET MF, RAS mutations were found in 14 (6.2%) cases, including 9 (4.0%) cases of NRAS mutations, 8 (3.5%) cases of KRAS mutations, and 3 (1.3%) cases of both NRAS and KRAS mutations. All of the NRAS mutations were located in codons 12 and 13. The median VAFs of RAS mutations were significantly lower than those of the driver mutations, confirming that they represent sub-clonal events that are acquired during the disease course. SETBP1, SRSF2, and MPL tended to be clustered with RAS mutations. Patients with RAS mutations had a higher number of additional oncogenic mutations (median, 3.36 vs 1.17, P<0.001) . RAS mutations had a statistically significant association with elevated monocyte cell counts (P=0.003) , lower platelet counts (P=0.026) , higher bone marrow blasts (P=0.022) , splenomegaly (P=0.005) , and very high-risk (VHR) karyotype abnormality percentage (P=0.031) . In univariate analysis, the OS of patients with NRAS mutations were significantly inferior in the entire MF and PMF cohorts (P=0.001, P=0.008) . In a multivariate model, NRAS retained an independent negative prognostic factor in PMF.
Conclusion: RAS gene mutations were constantly related to elevated monocyte cell counts, lower platelet counts, higher bone marrow blasts, and VHR karyotype abnormality percentage that usually defined high-risk disease and often occurred as sub-clonal events. NRAS mutation is an independent poor prognostic factor in PMF.

Entities:  

Keywords:  Mutation; Myelofibrosis; Prognosis; RAS gene

Year:  2020        PMID: 33445845      PMCID: PMC7840545          DOI: 10.3760/cma.j.issn.0253-2727.2020.12.004

Source DB:  PubMed          Journal:  Zhonghua Xue Ye Xue Za Zhi        ISSN: 0253-2727


骨髓纤维化(MF)包括原发性骨髓纤维化(PMF)、真性红细胞增多症(PV)后骨髓纤维化(post-PV MF)和原发性血小板增多症后骨髓纤维化(post-ET MF)[1]。除JAK2CALRMPL等驱动基因突变以外,MF尚有ASXL1SRSF2、IDH1/2及EZH2等非驱动基因突变[2]。最近有研究报道RAS基因突变的MF患者预后不良且白血病转化风险增高[3]。本研究中,我们对226例MF患者进行回顾性分析,探讨RAS基因突变MF患者的分子学特征、与临床和实验室参数之间的关系及对总生存(OS)的影响。

病例与方法

1. 病例资料:2011年12月至2019年12月在中国医学科学院血液病医院MDS诊疗中心确诊并完成二代基因测序的MF患者共226例,男135例(59.7%),女91例(40.3%)。按2016年世界卫生组织(WHO)PMF诊断标准或骨髓增殖性肿瘤研究和治疗国际工作组(IWG-MRT)建议的post-PV MF或post-ET MF诊断标准[4],其中PMF患者180例(79.6%),post-PV MF患者24例(10.6%),post-ET MF患者22例(9.7%)。定义从诊断到二代基因测序时间间隔≤6个月的患者为新诊断患者,从诊断到二代基因测序时间间隔>6个月的患者为诊断后测序患者[3],其中新诊断患者151例(66.8%),诊断后测序患者75例(33.2%)。 144例(63.7%)患者靶向测序检测基因突变时有可分析的染色体核型结果,其中正常核型94例(65.3%),异常核型50例(34.7%)。根据“两层”细胞遗传学危险度分层[5],28例(19.4%)患者检出不良染色体核型。根据改良版的“三层”细胞遗传学危险度分层[6]:非常高危(VHR)染色体核型5例(3.5%),不良染色体核型35例(24.3%),良好染色体核型104例(72.2%)。 共194例(85.8%)患者可追踪到治疗方案,54例(23.9%)接受芦可替尼或以芦可替尼为基础的治疗,4例(1.8%)接受造血干细胞移植,其他患者治疗药物包括促造血药物(糖皮质激素、雄激素及类似物、红细胞生成素)、免疫调节剂(沙利度胺或来那度胺)和降细胞治疗药物(羟基脲或干扰素),9例(4.0%)加速期患者接受了地西他滨或阿扎胞苷治疗。 2. 靶向测序检测基因突变:所有患者DNA样本来源于骨髓单个核细胞。使用PCR引物扩增目的基因组(涵盖112个血液肿瘤相关基因),富集后采用Ion Torrent半导体测序平台进行测序。平均基因覆盖率98.3%,平均测序深度1140×。测序后原始数据利用CCDS、人类基因组数据库(HG19)、dbSNP(v138)、1000genomes、COSMIC、PolyPhen-2等数据库进行生物信息学分析,筛选致病性基因突变位点[7]–[8]。 3. 基因突变时序分析:采用等位基因突变频率(VAF)对携带两种及以上突变的患者进行突变时序分析[9]。同一患者存在1个以上突变时,VAF值显著高的突变被判定为主克隆,VAF值显著低的突变被判定为亚克隆,VAF值之间无显著差异时均被判定为主克隆。 4. 随访:随访截止时间为2020年7月31日,随访资料来源于住院病例、门诊病例及电话随访记录。对随访期间死亡的病例,按照病例记录或与患者家属电话联系确认。中位随访时间为36(1~194)个月,失访患者共34例(15%)。OS期按患者在我院首次留取基因突变二代测序检测标本时间至死亡或随访截止日期计算。 5. 统计学处理:统计分析利用SPSS 25.0软件完成。非正态分布的计量资料采用Mann-Whitney U检验,数据以“中位数(范围)”表示,分类资料采用卡方检验或Fisher精确概率法进行差异性分析,突变时序分析采用皮尔森拟合优度检验[10]。单因素分析采用Kaplan-Meier法绘制生存曲线和Log-rank检验,多因素分析采用Cox回归分析,双侧检验P<0.05为差异有统计学意义。应用Graphpad Prism 7.0及R 3.6.1制图。

结果

一、RAS基因突变特征 1. RAS基因突变频率:226例MF患者中共14例(6.2%)检出NRAS/KRAS基因突变,其中NRAS突变9例(4.0%),KRAS突变8例(3.5%),NRASKRAS突变并存3例(1.3%)。 NRAS/KRAS基因突变的PMF患者13例(7.2%),post-PV/ET MF患者中仅1例(4.2%),二者检出率差异无统计学意义。14例患者共检出4种NRAS突变及7种KRAS突变,均为错义突变。所有NRAS突变均发生在第12及13号密码子。13例伴NRAS/KRAS突变PMF患者的临床资料详见表1。
表1

伴NRAS/KRAS基因突变骨髓纤维化患者临床资料

例号性别年龄诊断MIPSS70-plus分级染色体核型基因外显子DNA序列改变氨基酸序列改变突变类型VAF(%)
149PMF中危46,XX[15]NRASExon235G→AG12D错义18.7
262PMF高危46,XY,add(12)(p13)[20]NRASExon235G→AG12D错义27.5
331PMF高危46,XX,del(2)(q32),del(12)(p12)[1]/46,XX,del(12)(p12)[19]NRASExon235G→AG12D错义19.9
448PMF极高危46,XX,i(17)(q10)[13]/46,XX,?del(20)(q11.2q13.3)[2]/46,XX[5]NRASExon235G→TG12V错义8.8
NRASExon235G→CG12A错义26.8
NRASExon235G→AG12D错义8.7
550PMF极高危45,X,-Y[17]/46,XY[3]NRASExon238G→AG13D错义2.9
NRASExon235G→AG12D错义11.0
KRASExon3182A→CQ61P错义37.5
663PMF高危46,XY[20]NRASExon235G→TG12V错义2.4
KRASExon4436G→CA146P错义5.8
767PMFNDKRASExon234G→AG12S错义2.6
864PMF中危46,XX[20]NRASExon235G→TG12V错义3.9
951PMF中危46,XY[20]KRASExon4436G→AA146T错义21.2
1051PMF低危46,XY[14]KRASExon257G→TL19F错义2.1
KRASExon234G→CG12R错义11.9
1158PMF低危46,XY[17]NRASExon235G→AG12D错义14.5
1266PMF高危46,XY[20]KRASExon253C→AA18D错义39.7
1361PMF46,XY[4]NRASExon235G→AG12D错义3.2
1472post-PVMF46,XY[1]KRASExon234G→AG12S错义6.6

注:VAF:等位基因突变频率;PMF:原发性骨髓纤维化;post-PV MF:真性红细胞增多症后骨髓纤维化;ND:无数据

注:VAF:等位基因突变频率;PMF:原发性骨髓纤维化;post-PV MF:真性红细胞增多症后骨髓纤维化;ND:无数据 2. RAS基因突变负荷分析:NRAS突变VAF值中位数为16.6%(2.4%~27.5%),KRAS突变VAF值中位数为5.8%(2.1%~39.7%),远低于JAK2V617F(VAF值中位数45.5%)、CALR(VAF值中位数为40.0%)和MPL(VAF值中位数为50.0%)。对11例同时有NRAS/KRAS突变及其他基因突变的PMF患者各基因突变VAF值进行分析,NRAS/KRAS突变10例(90.9%)为亚克隆突变,1例(9.1%)为主克隆突变,提示RAS基因突变在PMF患者中为较晚发生的事件(图1、图2)。
图1

骨髓纤维化患者各突变基因等位基因突变频率(VAF)比较

图2

除NRAS/KRAS以外突变个数大于2的部分患者各基因等位基因突变频率(VAF)分布

3. RAS基因共突变特征:伴有NRAS/KRAS基因突变、无NRAS/KRAS基因突变患者携带平均基因突变数目分别为(3.36±1.01)个、(1.77±1.03)个(P<0.001)。 MF患者中突变比例≥2%的基因突变有JAK2(62.1%)、ASXL1(30.0%)、CALR(15.4%)、TET2(10.1%)、U2AF1(8.8%)、SRSF2(5.7%)、SETBP1(5.3%)、MPL(4.4%)、CBL(4.4%)、SF3B1(4.4%)、TP53(3.1%)、RUNX1(3.1%)、DNMT3A(2.2%)和ZRSR2(2.2%)(图3)。141例(62.4%)患者至少伴有一个致病非驱动基因突变,PMF患者较常见(>5%)的非驱动基因突变有ASXL1(32.8%)、U2AF1(11.1%)、TET2(9.4%)、SRSF2(7.2%)和SETBP1(6.7%);post-PV/ET MF患者较常见的非驱动基因突变为ASXL1(23.9%)和TET2(15.2%),未检出U2AF1基因突变。NRAS/KRAS基因突变常与SETBP1(P=0.03)、SRSF2(P=0.037)、MPL(P=0.017)共同发生。NRAS突变与SETBP1突变(P=0.008)呈正相关。
图3

226例骨髓纤维化患者基因突变谱系

二、RAS基因突变与临床和实验室参数相关性分析 NRAS/KRAS基因突变组与无突变组相比,外周血单核细胞水平升高(P=0.003)、血小板水平减低(P=0.026)、骨髓原始细胞比例升高(P=0.022)、脾脏肋缘下≥10 cm患者比例更高(P=0.005)和VHR染色体核型发生率升高(P=0.031),差异均有统计学意义(表2)。
表2

有、无NRAS/KRAS基因突变骨髓纤维化患者的临床及实验室特征比较

指标NRAS/KRAS基因突变(14例)无NRAS/KRAS突变(212例)统计量P
年龄[岁,M(范围)]59.5(31~72)56(13~86)−0.4100.682
诊断[例(%)]1.1630.674
 PMF13(92.9)167(78.4)
 post-ETMF0(0)22(10.4)
 post-PVMF1(7.1)23(10.8)
性别[例(%)]0.8490.413
 男10(71.4)125(59.0)
 女4(28.6)87(41.0)
HGB[g/L,M(范围)]91(57~208)98(34~192)−0.5870.557
WBC[×109/L,M(范围)]7.47(3.12~39.93)7.31(0.90~123.27)−0.5990.549
PLT[×109/L,M(范围)]80(9~715)190(1~1921)−2.2240.026
ANC[×109/L,M(范围)]3.97(1.14~35.79)4.43(0.17~57.20)−0.9370.349
单核细胞绝对计数[×109/L,M(范围)]0.99(0.12~8.93)0.39(0.02~73.70)−2.9390.003
外周血原始细胞比例[%,M(范围)]0(0~34)0(0~30)−1.4120.158
骨髓原始细胞比例[%,M(范围)]2.5(0~25)0.5(0~70)−2.2980.022
脾脏左肋缘下≥10cm[例(%)]9(75.0)66(32.8)8.8250.005
有体质性症状[例(%)]2(14.3)51(24.1)0.6980.529
输血依赖[例(%)]2(15.4)29(15.8)0.0011.000
LDH[U/L,M(范围)]578.4(348.7~1912.2)468.0(38.0~3362.0)−1.7450.081
染色体核型[例(%)]6.0710.031
 良好核型8(72.7)96(72.2)
 不良核型1(9.1)34(25.6)
 非常高危2(18.2)3(2.3)
JAK-STAT驱动基因突变[例(%)]8.8640.036
 JAK26(42.9)135(63.7)
 CALR3(21.4)33(15.6)
 MPL3(21.4)7(3.3)
 三阴性2(14.3)37(17.5)

注:PMF:原发性骨髓纤维化;post-PVMF:真性红细胞增多症后骨髓纤维化;post-ETMF:原发性血小板增多症后骨髓纤维化。三阴性:未检测到JAK2、MPL和CALR基因突变

注:PMF:原发性骨髓纤维化;post-PVMF:真性红细胞增多症后骨髓纤维化;post-ETMF:原发性血小板增多症后骨髓纤维化。三阴性:未检测到JAK2MPLCALR基因突变 由于本队列中NRAS/KRAS突变的post-PV/ET MF患者仅有1例,故未能进行统计比较。NRAS/KRAS基因突变组与无突变组的PMF患者临床和实验室参数比较详见表3。NRAS/KRAS突变的PMF患者与无突变组相比,外周血单核细胞水平升高(P=0.001)、骨髓原始细胞比例升高(P=0.014)和脾脏肋缘下≥10 cm患者比例更高(P=0.002)。按照年龄≤70岁人群的基于突变和染色体核型改进的国际预后积分系统(MIPSS70-plus)[11]对PMF患者进行预后分组,NRAS/KRAS突变组、无突变组高危及极高危患者比例分别为53.8%、31.1%(P=0.505)。
表3

有、无NRAS/KRAS基因突变原发性骨髓纤维化患者临床和实验室参数比较

指标NRAS/KRAS基因突变组(13例)无NRAS/KRAS突变组(167例)统计量P
年龄[岁,M(范围)]58(31~67)55(21~86)−0.1000.921
性别[例(%)]0.3390.769
 男9(69.2)102(61.1)
 女4(30.8)65(38.9)
HGB[g/L,M(范围)]88(57~129)93(34~178)−0.5060.613
WBC[×109/L,M(范围)]7.61(3.12~39.93)6.97(0.90~123.27)−1.0500.294
PLT[×109/L,M(范围)]70(9~715)178(1~1921)−1.7900.073
ANC[×109/L,M(范围)]4.39(1.14~35.79)3.69(0.17~57.20)−0.2480.804
单核细胞绝对计数[×109/L,M(范围)]1.02(0.36~8.93)0.38(0.02~13.00)−3.3490.001
外周血原始细胞比例[%,M(范围)]0(0~34)0(0~30)−1.3380.181
骨髓原始细胞比例[%,M(范围)]3(0~25)1(0~70)−2.4620.014
脾脏左肋缘下≥10cm[例(%)]9(81.8)53(34.0)10.0760.002
有体质性症状[例(%)]2(15.4)42(25.1)0.6230.738
输血依赖[例(%)]2(16.7)25(16.8)0.0001.000
LDH[U/L,M(范围)]578.5(348.7~1912.2)476.5(38.0~3362.0)−1.6180.106
染色体核型[例(%)]5.1680.055
 良好8(72.7)76(71.7)
 不良1(9.1)27(25.5)
 非常高危2(18.2)3(2.8)
JAK-STAT驱动基因突变[例(%)]9.5370.027
 JAK25(38.5)99(59.3)
 CALR3(23.1)26(15.6)
 MPL3(23.1)5(3.0)
 三阴性2(15.4)37(22.2)
MIPSS70-plus分级[例(%)]2.2560.506
 低危2(18.2)25(25.5)
 中危2(18.2)21(21.4)
 高危4(36.4)41(41.8)
 极高危3(27.3)11(11.2)

注:三阴性:未检测到JAK2、MPL和CALR基因突变

注:三阴性:未检测到JAK2MPLCALR基因突变 三、RAS基因突变对OS的影响 截至2020年7月31日,随访患者中死亡65例(28.8%),NRAS/KRAS突变患者死亡6例(42.9%),NRAS突变组5例(55.6%),KRAS突变组1例(12.5%),无RAS突变组59例(27.8%)。NRAS/KRAS突变组患者中位OS时间为80.0(95%CI 0~188.5)个月,NRAS突变组中位OS时间为6(95%CI 3.4~8.5)个月,KRAS突变组未达到,无NRAS/KRAS突变组中位OS时间为144.0(95%CI 48.8~239.1)个月。 NRAS/KRAS突变的MF患者及PMF患者OS时间较无突变患者缩短(P=0.026,P=0.018),NRAS突变的MF患者及PMF患者OS时间较无突变患者显著缩短(P=0.001,P=0.008),KRAS突变对MF患者及PMF患者预后无影响(P>0.05)。对PMF患者中突变频率≥2%的基因分别进行Logrank检验,除NRAS突变外,还有ASXL1DNMT3ASRSF2突变与更短的OS显著相关(P<0.05),SF3B1突变及U2AF1突变患者的OS时间有缩短的趋势(P=0.082,P=0.093)。 单因素分析显示,HGB<100 g/L、PLT<100×109/L、外周血原始细胞比例≥1%、不良染色体核型是影响预后的不良因素。将单因素分析中P<0.1的因素纳入COX回归进行多因素分析,结果显示NRAS突变是独立的预后不良因素(HR=0.120,95%CI 0.010~0.286,P<0.001)。其他独立不良OS因素包括:DNMT3A基因突变(HR=0.053,95%CI 0.001~0.101,P=0.001)、HGB<100 g/L(HR=2.377,95%CI 1.012~5.583,P=0.047)。

讨论

MF患者NRAS/KRAS基因突变检出率约为5%[3],[12]–[14]。本研究中MF患者NRAS/KRAS基因突变检出率为6.2%,NRAS突变检出率为4.0%,KRAS检出率为3.5%,NRAS/KRAS突变位点均为错义突变,NRAS突变位点为第12和第13号密码子,最常见的为NRAS G12DNRAS G12V,与文献[3],[12]报道基本一致。尽管有研究报道NRAS/KRASPMF中较post-PV/ET MF更为常见[12],但本研究未发现NRAS/KRAS检出率在两者中有统计学差异,可能与本研究样本量,特别是post-PV/ET MF患者数较少有关。 本研究中,NRAS/KRAS基因突变的突变负荷远低于JAK2CALRMPLSRSF2DNMT3ATET2等其他突变基因的突变负荷,突变时序结果提示NRAS/KRAS基因突变常为MF晚期发生的亚克隆突变。Santos等[3]及Coltro等[12]发现在MF患者中,NRAS/KRAS突变与ASXL1EZH2SETBP1SRSF2等突变呈正相关,在本研究中,NRAS/KRAS突变常与信号转导及转录因子相关基因突变同时发生,如SETBP1MPL等,但未发现NRAS/KRAS突变与ASXL1突变呈正相关。此外,本研究中NRAS/KRAS突变患者无TP53突变者,这与先前的研究结果类似[3],揭示疾病的进展可能与多条通路相关。 既往研究显示NRAS/KRAS突变与血小板计数减低、骨髓原始细胞比例增高等高危临床实验室指标密切相关[3],本研究验证了该结果。此外,我们发现NRAS/KRAS突变与VHR染色体核型、单核细胞水平升高及脾脏增大相关。生存分析显示KRAS突变对PMF患者预后无显著影响,NRAS突变PMF患者中位OS时间明显短于非突变组,在纳入其他临床及实验室指标后,NRAS突变仍为PMF患者独立的不良预后因素。因本研究病例数较少,无法评估RAS突变对post-PV/ET MF的预后价值。既往小鼠模型研究发现NRAS突变小鼠通过激活ERK1/2导致造血干细胞过度增殖及髓系分化偏倚,表现为白细胞及粒单核水平增高、脾大及发生髓系增殖性肿瘤风险增高[15]–[16],通过抑制MEK/ERK通路可抑制造血干细胞过度增殖及缩小脾脏体积[16],为RAS突变PMF患者的治疗提供了新靶点。RAS通路突变患者对芦可替尼的治疗反应低于无突变患者[12],未来可进一步探究在RAS突变的PMF患者中联合使用JAK2抑制剂及RAS/MEK/ERK通路抑制剂的可能性。 目前认为RAS通路突变为MF患者的不良预后因素[3],[12]–[13]。本研究结果表明,NRAS突变在单因素及多因素分析中与更短的OS显著相关,KRAS突变对预后无影响。除NRAS突变外,多因素分析结果还表明DNMT3A突变是PMF患者独立的不良预后因素。作为表观遗传修饰相关基因,DNMT3A突变被认为可能与骨髓增殖性肿瘤患者白血病转化风险增高密切相关并提示预后不良[17]–[19],其预后价值有待扩大样本量继续探索。 综上,本研究结果显示,MF患者NRAS突变主要类型为第12号密码子突变,NRAS/KRAS突变多为疾病晚期发生的分子事件。NRAS/KRAS突变患者外周血单核细胞水平升高、血小板计数减低、骨髓原始细胞比例升高、脾脏增大(≥肋缘下10 cm)和VHR染色体核型发生率升高。NRAS突变在MF及PMF患者中提示预后不良。本组病例尚不能分析NRAS/KRAS异常对不同类型MF患者生存情况的影响以及对JAK2抑制剂治疗敏感性的影响,有待扩大病例数后进一步研究。
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Authors:  Jinyong Wang; Guangyao Kong; Yangang Liu; Juan Du; Yuan-I Chang; Sin Ruow Tey; Xinmin Zhang; Erik A Ranheim; Marc K Saba-El-Leil; Sylvain Meloche; Alisa Damnernsawad; Jingfang Zhang; Jing Zhang
Journal:  Blood       Date:  2013-05-17       Impact factor: 22.113

5.  Prognostic impact of RAS-pathway mutations in patients with myelofibrosis.

Authors:  Fabio P S Santos; Bartlomiej Getta; Lucia Masarova; Christopher Famulare; Jessica Schulman; Tarcila S Datoguia; Renato D Puga; Raquel de Melo Alves Paiva; Maria E Arcila; Nelson Hamerschlak; Hagop M Kantarjian; Ross L Levine; Paulo Vidal Campregher; Raajit K Rampal; Srdan Verstovsek
Journal:  Leukemia       Date:  2019-10-18       Impact factor: 11.528

6.  GIPSS: genetically inspired prognostic scoring system for primary myelofibrosis.

Authors:  Ayalew Tefferi; Paola Guglielmelli; Maura Nicolosi; Francesco Mannelli; Mythri Mudireddy; Niccolo Bartalucci; Christy M Finke; Terra L Lasho; Curtis A Hanson; Rhett P Ketterling; Kebede H Begna; Animesh Pardanani; Alessandro M Vannucchi
Journal:  Leukemia       Date:  2018-03-23       Impact factor: 11.528

7.  [How I treat primary myelofibrosis].

Authors:  Z J Xiao
Journal:  Zhonghua Xue Ye Xue Za Zhi       Date:  2019-03-14

8.  [Gene mutations from 511 myelodysplastic syndromes patients performed by targeted gene sequencing].

Authors:  B Li; J Y Wang; J Q Liu; Z X Shi; S L Peng; H J Huang; T J Qin; Z F Xu; Y Zhang; L W Fang; H L Zhang; N B Hu; L J Pan; S Q Qu; Z J Xiao
Journal:  Zhonghua Xue Ye Xue Za Zhi       Date:  2017-12-14

9.  Revised cytogenetic risk stratification in primary myelofibrosis: analysis based on 1002 informative patients.

Authors:  Ayalew Tefferi; Maura Nicolosi; Mythri Mudireddy; Terra L Lasho; Naseema Gangat; Kebede H Begna; Curtis A Hanson; Rhett P Ketterling; Animesh Pardanani
Journal:  Leukemia       Date:  2018-02-02       Impact factor: 11.528

10.  [Chinese guideline on the diagnosis and treatment of primary myelofibrosis (2019)].

Authors: 
Journal:  Zhonghua Xue Ye Xue Za Zhi       Date:  2019-01-14
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1.  Detection of RAS gene mutation and its clinical significance in children with acute lymphoblastic leukemia.

Authors:  Yan-Ling Yao; Xi-Ge Wang; Xue-Lian Zhao; Shuai-Quan Li; Yu-Jie Zhou; Yi-Zhuo Xu
Journal:  Zhongguo Dang Dai Er Ke Za Zhi       Date:  2022-03-15

Review 2.  Genetic Background of Polycythemia Vera.

Authors:  Mathilde Regimbeau; Romain Mary; François Hermetet; François Girodon
Journal:  Genes (Basel)       Date:  2022-04-02       Impact factor: 4.141

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