Literature DB >> 31775489

[The effects of long non-coding RNA AC002454.1 on the biological behaviour of NB4 leukemia cells].

L Cao1, S Y Hu1, J Pan2, Y Wang1, H L He1, J Lu1, P F Xiao1, Z Z Du1, G X Gu2, Y H Chai1.   

Abstract

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Year:  2019        PMID: 31775489      PMCID: PMC7364985          DOI: 10.3760/cma.j.issn.0253-2727.2019.10.014

Source DB:  PubMed          Journal:  Zhonghua Xue Ye Xue Za Zhi        ISSN: 0253-2727


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虽然已陆续发现一些与癌症发生发展相关的功能性长链非编码RNA(lncRNA),但人们对lncRNA功能和机制的研究尚处于起步阶段,目前已知确切功能的lncRNA数量极少。lncRNA与多种血液系统疾病相关,然而其在白血病发病中的作用尚不清楚。我们前期实验揭示了急性白血病(AL)患儿lncRNA与正常儿童存在明显差异[1],本研究选取差异最显著的AC002454.1,探讨AC002454.1在儿童AL中的表达及其对NB4白血病细胞生物学功能的影响。

对象与方法

一、研究对象 选取经细胞形态学、免疫学、细胞遗传学和分子生物学(MICM)分型诊断的初诊AL患儿43例,其中急性淋巴细胞白血病(ALL)21例、急性髓系白血病(AML)22例;中位年龄5.85(1.3岁~13.0)岁,男31例、女12例。骨髓象正常的21例非恶性血液病患儿作对照组,中位年龄7.1(0.7~15.0)岁,男9例、女12例。收集骨髓标本用于lncRNA芯片扫描及实时荧光定量PCR(qRT-PCR)检测,并对在儿童AL中显著异常表达的lncRNA进行验证。标本采集经医院伦理委员会批准及患者知情同意。 二、细胞株和培养 白血病细胞株NB4购于美国模式培养物集存库(ATCC)。培养于含10%胎牛血清的RPMI 1640培养基中,采用37 °C、含5% CO2的恒温无菌培养箱培养。 三、主要试剂 基因芯片表达配套试剂盒购自美国Agilent公司;SuperRT cDNA第一链合成试剂盒购自北京康为世纪生物科技有限公司;SYBR Green mix购自瑞士Roche公司;Cell Counting Kit-8试剂盒购自上海华雅思创生物科技有限公司;溴化乙锭(PI)、Triton X-100购自上海生工生物工程技术服务有限公司;RNase A购自美国Thermo Scientific公司;PE Annexin Ⅴ Apoptosis Detection Kit 1购自美国BD公司;RIPA裂解液、BCA蛋白定量试剂盒购自江苏碧云天生物技术研究所;TRIzolSDS、聚丙烯酰胺、蛋白Marker购自美国Invitrogen公司;PVDF膜、化学发光试剂盒购自美国Millipore公司;鼠抗人GAPDH抗体、鼠抗人CDK6抗体、鼠二抗购自美国Cell Signaling Technology公司。 四、实验方法 1.lncRNA芯片扫描和数据分析:将骨髓单个核细胞标本加入1 ml TRIzol,干冰运输至上海康成生物工程有限公司进行,经过Microarray基因芯片扫描仪扫描后得到原始数据,原始数据经过统计软件转换后进行统计分析,经过图像采集和数据分析后得到lncRNA数据,设定差异表达的标准:差异改变倍数≥2.0,P<0.05,根据此标准筛选得到AL患儿与对照组之间lncRNA的差异表达谱。 2.qRT-PCR:利用实时荧光定量PCR仪(LightCycler 480® Ⅱ,瑞士Roche公司产品)检测lncRNA相对表达量,由Invitrogen公司合成引物。定量PCR扩增反应体系20 µl,含0.2 mmol/L引物各0.1 µl,10 µl SYBR Green mix;反应条件:95 °C预变性10 min,95 °C变性15 s,60 °C退火15 s,72 °C延伸60 s,共进行45个循环,后95 °C 10 s,65 °C 60 s,4 °C∞。以甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)为内参基因,以104×2−ΔCT计算每个基因的相对表达量。 3.细胞株的收获与冻存:待NB4细胞处于对数生长期,细胞密度达1×l06/ml时收获细胞。1 500 r/min离心5 min,弃上清,保留细胞沉淀,每管中各加入1 ml冻存液,混匀,编号后放入−80 °C冰箱保存。 4.RNA的提取和cDNA合成:采用TRIzol提取细胞的总RNA后,采用分光光度计测定RNA浓度,通过琼脂糖凝胶电泳评估RNA纯度。将所得的RNA利用SuperRT cDNA第一链合成试剂盒10 µl体系逆转录cDNA。 5.AC002454.1沉默病毒的设计、合成及细胞转染:AC002454.1沉默病毒由上海吉凯基因化学技术有限公司完成。根据试剂盒说明书操作。实验分为3组:实验组为NB4细胞转染时加入AC002454.1沉默病毒;阴性对照组为NB4细胞转染时加入阴性对照病毒;空白对照组为未进行任何干预的NB4细胞。并利用流式细胞仪检测转染效率。 6.CCK-8法检测细胞增殖:收集空白对照组、阴性对照组及实验组对数生长期细胞(5×104/ml)分别接种于4块96孔板中,空白对照组、阴性对照组、实验组及培养基对照组各设5个平行孔,培养24、48、72、96 h检测细胞增殖情况,按照CCK-8试剂盒操作说明,检测前每孔各加入20 µl CCK-8试剂,后于37 °C、5%CO2恒温培养箱孵育2 h,于酶标仪检测,在450 nm波长处读取相应的吸光度(A)值。 7.细胞周期检测:取对数生长期细胞,制备单细胞悬液;PBS洗涤2次,离心后弃上清液;加入预冷的75%乙醇固定,吹打均匀,4 °C固定过夜;检测前离心,PBS洗涤2次;加入500 µl PBS(含50 µg/ml PI)、100 µg/ml RNase A、0.2% Triton X-100,4 °C避光孵育30 min;流式细胞术检测各周期DNA含量。实验重复3次。 8.细胞凋亡检测:制备单细胞悬液,调整细胞密度,以每孔2×105细胞接种于6孔板,培养48 h,PBS洗涤2次,离心收集并重悬计数,保证每个待检样本细胞量为(5~10)×105个;离心收集细胞后,加入100 µl 1×结合缓冲液,吹匀;加入5 µl 7-ADD及5 µl PE,25 °C避光放置,流式细胞术检测分析;结果判定:左下象限显示活细胞;其余象限为凋亡细胞。 9.Western blot法测定蛋白表达:收集各组细胞采用RIPA裂解液裂解后提取蛋白,应用BCA蛋白定量试剂盒进行蛋白定量。取20 µg总蛋白行SDS-PAGE,然后转移至聚偏二氟乙烯膜,膜封闭后加入一抗孵育过夜,TBST洗膜后加入二抗稀释液封闭1 h,洗涤后用增强的化学发光试剂盒显影,利用Amersham Imager 600显像系统扫描条带。 五、统计学处理 采用SPSS 17.0软件进行统计处理,同时采用GraphPad Prism 5软件进行绘图。结果以均数±标准差表示,两样本均数的比较采用t检验。以P<0.05为差异有统计学意义。

结果

1.筛选并验证儿童AL异常表达的lncRNA:从前期研究基因芯片数据中选取了97个异常表达的lncRNA,对21个儿童ALL样本、22个儿童AML样本和21个对照样本进行qRT-PCR验证并比较。结果显示:和对照样本比较,儿童ALL组16个lncRNA表达差异显著(P值均<0.05),其中9个上调(uc002ehu.1、AC002454.1、uc001guz.2、BC035649、uc001kpt.2、AK123765、NR_026776、NR_027182、ENST00000508489),7个下调(ENST00000415964、uc010arh.1、ENST00000457799、ENST00000511213、NR_002712、X61079、ENST00000417930);儿童AML组24个lncRNA表达差异显著(P值均<0.05),其中12个上调(AC002454.1、uc002ehu.1、ENST00000509150、uc001guz.2、ENST00000457457、uc001kpt.2、NR_027182、AK123765、BC031319、AK124936、uc003hhv.1、NR_026776),12个下调(AK027193、AK024584、BC005232、AK094982、uc003ebe.1、ENST00000512129、AF088004、uc002vje.1、uc010arh.1、ENST00000428188、ENST00000457799、ENST00000415964)。AC002454.1表达差异最显著(P=0.040,P=0.002),尤其在AML组表达明显升高(图1)。
图1

AC002454.1在对照组、急性淋巴细胞白血病(ALL)组和急性髓系白血病(AML)组的表达

2.AC002454.1沉默病毒的构建及转染效率:构建沉默AC002454.1的慢病毒载体并转染至NB4细胞中。多次行转染实验,当转染条件被优化到转染效率>50%时,行下一步实验的检测(图2)。
图2

AC002454.1沉默病毒对NB4细胞的转染效率

A:流式细胞术显示NB4转染组的效率为80.2%;B:实时荧光定量PCR实验显示沉默AC002454.1基因的慢病毒载体可以下调NB4细胞的AC002454.1的表达

AC002454.1沉默病毒对NB4细胞的转染效率

A:流式细胞术显示NB4转染组的效率为80.2%;B:实时荧光定量PCR实验显示沉默AC002454.1基因的慢病毒载体可以下调NB4细胞的AC002454.1的表达 3.AC002454.1对NB4细胞增殖的影响:用沉默AC002454.1的慢病毒载体转染NB4细胞,采用CCK-8细胞增殖检测试剂盒分析其对细胞增殖的影响,结果显示48、72、96 h实验组均出现细胞增殖抑制(P值均<0.01)(图3)。
图3

下调AC002454.1表达对NB4细胞增殖的影响(实验重复3次。与阴性对照组比较,aP<0.01)

4.AC002454.1对NB4细胞周期的影响:流式细胞术检测结果显示,下调AC002454.1表达后G2/M期NB4细胞比例显著增加(P<0.01)(图4)。
图4

下调AC002454.1表达对NB4细胞周期的影响(实验重复3次。与阴性对照组比较,aP<0.01)

5.AC002454.1对NB4细胞凋亡的影响:流式细胞术结果显示,空白对照组、阴性对照组、实验组的凋亡率分别为(0.80±0.53)%、(0.80±0.44)%和(4.53±0.90)%,下调AC002454.1表达后NB4细胞凋亡率增加(P=0.003)。 6.AC002454.1对CDK6蛋白表达的影响:采用Western blot方法检测转染后的NB4细胞CDK6表达。结果显示,下调AC002454.1表达后NB4细胞的CDK6蛋白表达下降(图5)。
图5

Western blot法检测下调AC002454.1表达后NB4细胞CDK6蛋白的表达

1:空白对照组;2:阴性对照组;3:实验组

Western blot法检测下调AC002454.1表达后NB4细胞CDK6蛋白的表达

1:空白对照组;2:阴性对照组;3:实验组

讨论

目前研究提示lncRNA的功能异常与人类多种肿瘤密切相关,如MALAT1是最早发现与肿瘤相关的lncRNA之一,在肺癌、膀胱癌、乳腺癌等多种肿瘤中发现MALAT1水平上调,提示MALAT1可促进肿瘤细胞增殖导致肿瘤发生[2]。MEG3被发现有肿瘤抑制功能,在多种正常组织尤其是脑组织中呈现高表达,但在肺癌、肝细胞癌、脑膜瘤等肿瘤表达下降[3]。lncRNA在白血病发生、发展过程中的作用也有较多探索。Hirano等[4]发现,CCDC26通过调节KIT表达来控制髓样白血病细胞的生长,KIT抑制剂可能是对CCDC26有改变的AML患者有效的治疗药物。Trimarchi等[5]发现,LUNAR1能够调控IGF1R基因的表达、IGF1信号转导和T-ALL的生长,表明LUNAR1可以作为T-ALL的生物标志物和治疗靶点。Guo等[6]发现BGL3可以作为竞争性内源RNA结合miR-17、miR-93、miR-20amiR-20b、miR-106a和miR-106b来交叉调节PTEN表达,同时BCR-ABL通过c-Myc依赖性DNA甲基化抑制BGL3表达,揭示了BCR-ABL介导的细胞转化关键需要肿瘤抑制因子BGL3的沉默,并且提出了用于治疗BCR-ABL阳性白血病的潜在策略。以上研究提示,lncRNA在白血病的发生、发展中发挥重要作用,可作为白血病诊断的标志物,也是白血病治疗的潜在药物靶点。本研究从基因芯片数据中选取了97个异常表达的lncRNA,对21个儿童ALL样本、22个儿童AML样本和21个对照样本进行qRT-PCR验证并比较,结果发现AC002454.1表达差异最显著。对于AC002454.1目前少有研究,仅有研究提示AC002454.1可能参与子宫内膜异位症的发病机制[7]。本研究显示AC002454.1在AL患儿的表达显著高于对照组,尤其在AML表达更为显著,提示AC002454.1可能作为癌基因参与儿童AL的发生和发展。 本研究用沉默AC002454.1的慢病毒载体转染白血病细胞株NB4,分析AC002454.1对NB4细胞增殖和细胞周期的影响,结果显示沉默AC002454.1表达后NB4细胞增殖受到明显抑制,G2/M期显著延长。研究表明G2/M期阻滞的细胞非常易于凋亡,其增殖能力明显降低[8],提示AC002454.1对NB4细胞的增殖起促进作用并可抑制其凋亡。 本研究前期对基因芯片生物信息经Pathway与GO分析均提示,儿童AL中显著上调的lncRNA在细胞周期中可能具有重要功能,我们查阅(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/gene)网站,AC002454.1位于人类染色体7: 92836483-92917187,正靠近CDK6(位于人类染色体7: 92604921-92836627)。 CDK6是细胞周期素依赖激酶(Cyclin-Dependent Kinases, CDK)的丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶家族中的一员,CDK主要负责哺乳动物细胞的增殖,参与细胞周期进展和细胞分化[9]。研究表明CDK6可以通过结合EYA2蛋白并促进其降解,直接调控细胞周期,并在某些类型的细胞增殖和分化中起着重要的作用[10]。业已证实,在人体的很多肿瘤中CDK6、E2F-1表达均呈组蛋白修饰长链非编码RNA出现异常,其与肿瘤的发生发展有密切联系。高表达的CDK6可以促进白血病细胞的增殖及阻碍细胞分化,从而导致了白血病的发生,CDK6还是MLL-AF4融合蛋白的直接靶点,促进MLL基因重排的白血病细胞增殖,是MLL基因重排的白血病发生和进展的重要因素[11]–[13]。现有研究发现,CDK4/6抑制剂可通过抑制Rb磷酸化而抑制人类表皮生长因子受体2阳性乳腺癌细胞增殖[14]。在造血系统疾病方面,CDK4/6抑制剂Pd0332991通过阻滞细胞于G1期来抑制Ph+ ALL细胞株的增殖[15]。 为探讨AC002454.1与CDK6间的相关性,本实验采用Western blot方法检测转染后NB4细胞的CDK6表达。结果显示:下调AC002454.1表达后NB4细胞的CDK6表达明显低于空白对照组及阴性对照组,提示下调AC002454.1能降低NB4细胞CDK6表达,有望作为治疗白血病的靶标之一。 综上所述,AC002454.1在AL儿童表达明显高于正常儿童,说明AC002454.1可能参与儿童白血病的发生和发展。AC002454.1有促进NB4细胞增殖和抑制其凋亡、并使其G2/M期缩短影响细胞周期的功能。下调AC002454.1表达后NB4细胞的CDK6表达明显降低,提示AC002454.1可能通过增强CDK6表达促进白血病细胞的增殖,然而AC002454.1与CDK6相互作用机制尚不清楚,将在我们今后的研究中进一步探讨。
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