Preimplantation genetic diagnosis for cystic fibrosis: a case report.

Cystic fibrosis is an autosomal recessive disorder caused by mutations in the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator gene. This disorder produces a variable phenotype including lung disease, pancreatic insufficiency, and meconium ileus plus bilateral agenesis of the vas deferens causing obstructive azoospermia and male infertility. Preimplantation genetic diagnosis is an alternative that allows identification of embryos affected by this or other genetic diseases. We report a case of couple with cystic fibrosis; the woman had the I148 T mutation and the man had the Delta F508 gene mutation. The couple underwent in vitro fertilization, associated with preimplantation genetic diagnosis, and with subsequent selection of healthy embryos for uterine transfer. The result was an uneventful pregnancy and delivery of a healthy male baby.

INTRODUCTION

Assisted reproductive techniques progress each day as a result of improvements in laboratory technology, gametes and embryos culture. The introduction of new drugs to induce ovulation and the enhancement of cryopreservation techniques of gametes and embryos are part of this development.

These advances may benefit cystic fibrosis carrier couples or those with previous genetic disease with in vitro fertilization (IVF) associated to preimplantation genetic diagnosis (PGD), enabling the selection of healthy embryos before intrauterine transference.(

Preimplantation genetic diagnosis

The PGD was developed with the aim to provide alternatives for prenatal diagnosis in couples with risk to transmit genetic disease to their offspring. This procedure can be useful in cases of disease associated to sex, chromosome anomalies and disorders involving a single gene.(

During PGD, couples must undergone IVF, even in cases without indication to conduct this technique (Figure 1). To reduce risks of contamination by parental cells during IVF, it is recommended to use intracytoplasmic sperm injection (ICSI).(In the event of fertilization, embryos remain in culture until that one or more cells can be removal and submitted for genetic diagnosis.(

Figure 1

Preimplantation genetic diagnosis

For PGD, we used techniques based on the polymerase chain reaction (PCR) and molecular cytogenetics. After long-term use, the technique of fluorescent in situ hybridization (FISH) has been substituted by array-comparative genomic hybridization (aCGH),(which analysis specific amplifications and deletions of the genome. This latter enables the detection of gains and losses of genetic material in specific high resolution regions of genome (10 to 100 times higher than traditional techniques),( depending on the analysis platform used. In addition, aCGH provide a more accurate assessment of chromosomal anomalies and gene deletions or rearrangements than FISH.

Biopsy of embryos

Embryo biopsy involves removal of one or more cells from the early preimplantation embryo for subsequent genetic investigation. The first case of PGD in human was reported by Handyside et al.(

After ICSI of oocytes, embryos are cultured for 3rd days, or may be cultured until the blastocyst stage (5th/6th day of culture) to be, after that, submitted to biopsy, without negatively affecting implementation or gestational development.( The biopsy is often done on the 3rd day of embryonic development (staging six to eight cells) by the removal of one or two blastomeres from each embryo( (Figure 2). One of the advantages of postponing biopsy of embryos until the blastocyst stage, is the possibility of obtaining the larger number of cells (trophoderm) for genetic analysis, therefore, increasing the DNA copy number to improve accuracy of diagnosis.(

Figure 2

Biopsy

Cystic fibrosis

Cystic fibrosis (CF) is an autosomal recessive disorder caused by mutations in cystic fibrosis transmembrane conductance regulator (CFTR) gene that affects 1 of each 2,500 newborns.(This gene codifies a protein expressed in apical membrane of exocrine epithelia cells.( Mutations in CFTR gene produce an variable phenotype, including pulmonary disease, pancreatic disease, meconium ileus( and they are also involved in bilateral agenesis of the vas deferens, causing obstructive azoospermia and male infertility( (Figure 3).

Figure 3

Cystic fibrosis

CASE REPORT

We report a case of 33-year-old woman who did not have children and was first evaluated in March 25, 2004 due to difficulties in becoming pregnant for 2 years. She reported menarche at 11 years of age, regular menstrual cycle and a previous maternal history of breast cancer. Her transvaginal ultrasonography, showed a left paratubal cyst and suggestive imaging of right dermoid cyst measuring 16.0 x 12.0mm, which were stable for 12 months. Laboratorial exams and investigations for fungi and bacterial in vaginal secretions were normal. The patient had the I148 mutation in CF.

The patient was married for 12 years. Her husband was 33-years-old and had severe oligospermia and varicocele. After he underwent surgical correction, he progressed with improvement of seminal parameters, which sperm concentration increased from 0.75million/mL to 5.48million/mL. In addition, he had Delta F508 mutation in CF.

In September 2004, the patient underwent IVF/ICSI and seven embryos were obtained. Of these, three were transferred to the patient and four were frozen. Her pregnancy test was positive in October 22, 2004 and the transvaginal ultrasonography showed one gestational sac compatible at 5 weeks of gestation. In December 10, at 11 weeks of gestation, the patient underwent a chorionic villus biopsy that confirmed a male fetus. To assess the Delta F508 mutation, we used the PCR and 12% polyacrylamide gel electrophoresis. The I148T mutation was investigated using PCR with primers involving exon 4. Subsequently, we conduct an enzymatic digestion with Bsrl enzyme. These tests showed that the embryo had the CF mutation.

Later, the patient progressed to miscarriage and underwent a uterine curettage in May 2005. After that, she was not followed-up for 5 months.

We observed that the couple had TUB18 and KM19 polymorphisms, which enabled the identification of mutant alleles in future gestations, thereby increasing the possibility of detecting an affected embryo.

In April 2006, the patient underwent a hysteroscopy for uterine septum resection, secondary to previous curettage. The use of GnRH analogs, antibiotics and polivitaminic was reinstated in May 2006. However, there was a poor response to hypothalamic/hypophysary inhibitory factor.

In the next stage, we opted use her natural cycle by detecting follicles of 19.0mm of diameter in the right ovary and trilaminar endometrium with 10.0mm in thickeness detected by transvaginal ultrasonography. This was done August 31, 2006.

Four embryos previously frozen were biopsied using a laser guided technique for opening of zona pellucida, and the blastomeres were genetically assessed. There was no amplifications of primers in the first embryo, which prevented investigation for mutations. The second embryo blastomere had both mutations and, was therefore, a CF carrier. The third embryo blastomere had only the I148T mutation and in the fourth embryo there were no mutations found. The third and fourth embryos were transferred to the patients uterus on September 5, 2006. An echography done in November 6, 2006 showed a gestation compatible with 11 weeks and 5 days by biometry. The fetus presented nuchal translucency within normal ranges. In May 10 2007, the patient underwent cesarean section and gave birth to a male baby weighing 3,320g and with an Apgar score of 8/10 without intercurrences. She breastfed her baby for 2 months and returned to clinic visit 11 months after delivery. The child’s laboratorial exams showed polyglobulie and eosinophilia without other changes or complaints.

DISCUSSION

In recessive autosomal diseases, each parent of the child affected has one copy of a mutated allele. In each pregnancy, the possibility of the child born with the disease is 25%. Those with the disease are asymptomatic and couples become aware of the problem only when they experience this in their children, on his/her family or during previous investigations.( For this reason, the PGD associated with IVF/ICSI in a risk situation, seems to be the only way to avoid recurrence.(

Taylor et al. concluded that laser did not influence biopsy and nor affected the development of the embryo.( A study by Keymolen et al. conducted for 11 years at a Medical Genetic Center in Belgium, reported PGD in embryos from 47 couples; CF was the most common indication of these procedures (55% of cases). In their study 461 embryos were submitted to biopsy and among 25 newborns, no child was diagnosed with CF.(

We report a case of PGD that resulted in the birth of healthy child whose parents had a risk of transmiting CF. The mother had the I148T mutation in CF and the father had the Delta F508 mutation for the same disease. The couple underwent IVF/ICSI procedures, vitrification and devistrification of embryos, PGD and embryo transfer. The pregnancy was confirmed without intercurrences, and male baby was delivery by cesarean section.

The use of PGD was efficient in detecting CF in the embryos assessed. This was a positive experience and encourages a more frequent use of this technique. In addition, our findings may stimulate the development of PGD protocols for several other genetic disorders.

INTRODUÇÃO

As técnicas de reprodução assistida evoluem a cada dia, graças à melhoria nos equipamentos laboratoriais e dos meios para cultivo de gametas e embriões. A introdução de novas drogas utilizadas na indução da ovulação, e o aperfeiçoamento de técnicas de criopreservação de gametas e embriões são parte desse desenvolvimento.

Com esses avanços, casais portadores ou com antecedente de doenças genéticas podem ser beneficiados com a fertilização in vitro (FIV) associada ao diagnóstico genético pré-implantacional (PGD, preimplantation genetic diagnosis), permitindo a seleção de embriões saudáveis previamente à transferência intrauterina.(

Diagnóstico genético pré-implantacional

O PGD foi desenvolvido com o intuito de fornecer alternativas para o diagnóstico pré-natal em casais com risco de transmissão de doenças genéticas à prole. Esse procedimento pode ser útil nos casos de doenças ligadas ao sexo, anomalias cromossômicas e defeitos envolvendo um único gene.(

Na realização do PGD, os casais devem ser submetidos à FIV, mesmo na ausência da indicação dessa técnica (Figura 1). Para minimizar os riscos de contaminação por células parentais, durante a FIV, recomenda-se o uso da técnica de injeção intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI, intra-citoplasmic sperm injection).( Havendo fertilização, os embriões permanecem em cultivo, até que uma ou mais células possam ser retiradas e submetidas ao diagnóstico genético.(

Figura 1

Diagnóstico genético pré-implantacional

Para o PGD, utilizam-se técnicas baseadas na reação em cadeia da polimerase (PCR) e na citogenética molecular. Por muito tempo utilizada, a técnica de hibridização in situ fluorescente (FISH) vem sendo substituída pela hibridização comparativa do genoma em arrays (aCGH, Array-Comparative Genomic Hybridization),( que analisa amplificações e deleções específicas do genoma, permitindo detectar ganhos e perdas de material genético em regiões específicas do genoma com alta resolução (dez a cem vezes maior que as técnicas tradicionais),( dependendo da plataforma de análise utilizada. Além disso, aCGH permite um estudo mais acurado das anomalias cromossômicas e deleções ou rearranjos genéticos do que o FISH.

Biópsia de embrião

A biópsia de embrião consiste na remoção de uma ou mais células do embrião pré-implantação para subsequente estudo genético. O primeiro caso de PGD em humanos foi relatado por Handyside et al.(

Após técnica de ICSI, os embriões são cultivados até o 3º dia de clivagem, podendo o cultivo se prolongar até a fase de blastocisto (5º/6º dia de cultivo) para, então, serem submetidos à biópsia, sem que haja prejuízo à implantação ou ao desenvolvimento gestacional.( A biópsia é mais frequentemente realizada no 3º dia de desenvolvimento embrionário (estágio de seis a oito células), sendo que um ou dois blastômeros é retirado de cada embrião((Figura 2). Uma das vantagens ao postergar a biopsia de embriões até o estágio de blastocisto é a possibilidade de obtenção de maior número de células (trofoderma) para a realização da análise genética, aumentado o número de cópias de DNA e a acurácia no diagnostico.(

Figura 2

Biópsia

Fibrose cística

A fibrose cística (FC) é uma doença autossômica recessiva causada por mutações no gene regulador de condutância transmembrana na fibrose cística (CFTR, cystic fibrosis transmembrane conductance regulator) e afeta 1 a cada 2.500 recém-nascidos.( Esse gene codifica uma proteína expressa na membrana apical das células epiteliais exócrinas.( Mutações no gene CFTR produzem um fenótipo variável, incluindo doença pulmonar, insuficiência pancreática, íleo mecônio( e também estão envolvidas na agenesia bilateral dos ductos deferentes, causando azoospermia obstrutiva e infertilidade masculina( (Figura 3).

Figura 3

Fibrose cística

RELATO DE CASO

Relatamos aqui o caso de paciente do gênero feminino, 33 anos, sem filhos, inicialmente avaliada em 25 de março de 2004, com dificuldade para engravidar havia 2 anos. Referia menarca aos 11 anos, ciclo menstrual regular e antecedente materno de neoplasia maligna de mama. Apresentava, à ultrassonografia transvaginal, cisto simples paratubário à esquerda e imagem sugestiva de cisto dermoide à direita (16,0 x 12,0mm de diâmetro), estáveis havia 12 meses. Os exames laboratoriais e as pesquisas para fungo e bactérias, na secreção vaginal, foram normais. A paciente era sabidamente portadora da mutação I148 T para FC.

A paciente era casada há 12 anos. Seu parceiro de 33 anos apresentava acentuada oligospermia e diagnóstico de varicocele. Após correção cirúrgica, evoluiu com melhora dos parâmetros seminais, cuja concentração aumentou de 0,75 milhões/mL para 5,48 milhões/mL. O paciente era portador da mutação gênica Delta F508 para FC.

A paciente foi submetida à FIV/ICSI em setembro de 2004, com obtenção de sete embriões, dos quais três foram transferidos para o útero da paciente e quatro congelados. O teste de gravidez foi positivo em 22 de outubro de 2004, e a ultrassonografia transvaginal evidenciou um saco gestacional compatível com gestação de 5 semanas. Em 10 de dezembro, com 11ª semanas de gestação, foi submetida à biópsia de vilo corial confirmando sexo masculino. Para avaliação da mutação Delta F508, foi realizada PCR e eletroforese em gel de poliacrilamida a 12%. Para pesquisa da mutação I148 T, foi realizada PCR com primers envolvendo o éxon 4. Em seguida, procedeu-se à digestão enzimática com enzima Bsrl. Dessa forma, ficou comprovado tratar-se de embrião portador de FC.

A paciente evoluiu para abortamento e foi submetida à curetagem uterina em maio de 2005. Logo após, perdeu seguimento por 5 meses.

Observou-se que o casal apresentava os polimorfismos TUB18 e KM19, os quais possibilitariam a identificação de alelos mutantes em gestações futuras, aumentando, assim, o poder de detecção do embrião afetado.

Em abril de 2006, a paciente foi submetida à histeroscopia para ressecção de septo uterino secundário à curetagem prévia. Reiniciou o uso de análogo do GnRH em maio de 2006, além de antibiótico e polivitamínico. Entretanto, teve má resposta ao bloqueio do eixo hipotálamo-hipofisário.

Na etapa seguinte, optou-se por ciclo natural, com obtenção de folículo de 19,0mm de diâmetro em ovário direito e endométrio trilaminar, com 10,0mm de espessura à ultrassonografia transvaginal, realizada em 31 de agosto de 2006.

Os quatro embriões previamente congelados foram biopsiados, utilizando-se a técnica de laser para perfuração da zona pelúcida, e, então, os blastômeros foram submetidos à avaliação genética. Não houve amplificação de primers no primeiro embrião, não sendo possível a pesquisa das mutações. O segundo blastômero era portador de ambas as mutações e, desse modo, portador de FC. O terceiro apresentou apenas a mutação I148 T e o quarto blastômero não apresentou nenhuma das mutações estudadas. O terceiro e o quarto embriões foram, então, transferidos no dia 5 de setembro de 2006. Ecografia realizada em 6 de novembro de 2006 evidenciou gestação compatível com 11 semanas e 5 dias pela biometria e feto com translucência nucal dentro da normalidade. Em 10 de maio de 2007, a paciente foi submetida à cesariana, dando à luz um recém-nascido do sexo masculino, com 3.320g e Apgar 8/10, sem intercorrências. Amamentou durante 2 meses e retornou à clínica 11 meses após o parto. À ocasião, a criança apresentava poliglobulia e eosinofilia aos exames laboratoriais, sem quaisquer outras alterações ou queixas.

DISCUSSÃO

Nas doenças autossômicas recessivas, cada um dos pais da criança afetada é portador de uma única cópia do alelo mutado. Em cada concepção, a possibilidade da criança nascer com a doença é 25%. Os portadores são assintomáticos e os casais somente têm consciência do problema quando já tiverem filhos afetados, algum parente acometido pela doença ou se houve investigação prévia do casal.( Por essa razão, o PGD, associado à FIV/ICSI, parece ser a única maneira de evitar a recorrência.(

Taylor et al. concluíram que o laser não influenciou o procedimento de biópsia e nem afetou o desenvolvimento embrionário.( Keymolen et al., em estudo realizado ao longo de 11 anos no Centro de Genética Médica, na Bélgica, relataram PGD em embriões de 47 casais, sendo a FC a indicação mais frequente desses procedimentos (55% dos casos). No total, 461 embriões foram submetidos à biópsia e, ao final do estudo, dentre os 25 recém-nascidos, não houve nenhum diagnóstico de FC.(

Neste relato, descrevemos o caso de PGD com nascimento de bebê saudável cujo casal apresentava risco de transmissão hereditária de FC. A esposa era portadora da mutação I148 T para FC e seu marido era portador da mutação gênica Delta F508 para a mesma doença. O casal foi submetido a procedimento de FVI/ICSI, vitrificação e desvitrificação de embriões, PGD e transferência embrionária. Houve confirmação de gravidez, que ocorreu sem intercorrências, com nascimento de um menino por parto cesárea.

Em conclusão, o uso do PGD foi eficiente para a detecção de FC nos embriões avaliados. Essa experiência positiva serve de incentivo para o uso mais frequente dessa técnica e, também, estimula o desenvolvimento de protocolos de PGD para muitas outras doenças genéticas.