| Literature DB >> 34559503 |
Abstract
In the last decade, the number of studies and publications on extracellular vesicles (EV) and exosomes has boomed. Colombia has displayed interest and progress in their study as shown in the increase of research project publications and products. However, this research field is still developing and has its own analytical challenges and technical limitations. For planning research projects and developing EV studies it is necessary to consider what is the state of the scientific field worldwide concerning EV nomenclature and classification, available techniques, resources, requirements and quality specifications, and the institutions that regulate the field. Answering this question will elicit EV studies that comply with international standards and respond to institutional demands and recommendations. However, the scientific information available is scattered and not all the aspects are considered in full. In this update, the available information is condensed and the official terms and currently defined nomenclature is presented, as well as the evolution of the field, the homogenization of the experimental parameters, the establishment of scientific authorities, institutions, and resources, and the recommendations generated worldwide for their development and research including their isolation, characterization, and functional studies. Finally, I analyzed the national context in a critical way, considering institutional strengths, common mistakes, and available analytical techniques and technologies.Entities:
Keywords: Extracellular Vesicles; Exosomes; Cell-Derived Microparticles; chemical phenomenal; chemistry techniques; analytical; terminology as topic; resource guide
Mesh:
Year: 2021 PMID: 34559503 PMCID: PMC8519601 DOI: 10.7705/biomedica.5749
Source DB: PubMed Journal: Biomedica ISSN: 0120-4157 Impact factor: 0.935
Figura 1Gráfico de ontología genética para "vesícula extracelular" y algunos términos derivados
Comparación de los términos indexados en algunos vocabularios o diccionarios controlados
| VC | Término | Definición | Año de indexación |
|---|---|---|---|
| GO | Cualquier vesícula que es parte de la región extracelular Sinónimo: micropartícula | 2014 | |
| Una vesícula que contiene partes de una célula moribunda Los cuerpos apoptóticos pueden variar en tamaño, de 0,8 a 5 um (definición actualizada en el 2016). Sinónimos: vesícula apoptótica, ampolla apoptótica | 2011 | ||
| Una vesícula que se libera en la región extracelular por fusión de la membrana endosómica limitante de un cuerpo multivesicular con la membrana plasmática. Los exosomas extracelulares, también llamados simplemente exosomas, tienen un diámetro de aproximadamente 40-100 nm (definición actualizada en el 2016). Sinónimos: exosoma, exosoma vesicular extracelular | 2015 | ||
| Una vesícula extracelular liberada de la membrana plasmática y que varía en tamaño de aproximadamente 100 nm a 1.000 nm (definida en el 2015). Sinónimos: ectosoma, microvesícula extracelular, vesícula de desprendimiento o | 2015 | ||
| MeSH - DeCS | Estructuras limitadas por membrana derivadas de membranas celulares y del material citoplasmático, y liberadas al espacio extracelular. Circulan en el fluido extracelular y con la sangre periférica en la microvasculatura donde las células, mucho más grandes, no pueden circular, lo cual afecta una variedad de procesos de comunicación intercelular. | 2016 | |
| Tipo de vesícula extracelular que contiene ARN y proteínas, y se secreta en el espacio extracelular por exocitosis cuando los cuerpos multivesiculares se fusionan con la membrana plasmática | 2009 | ||
| Vesículas extracelulares generadas por el derramamiento de ampollas (sic) de membrana celular | 2009 |
VC: vocabulario controlado; GO: Gene ontology; MeSH: Medical Subject Headings; DeCS: Descriptores en Ciencias de la Salud Información tomada de 40,41,43,44 y (Gene Ontology Project, versión 2021-05-01)
Comparación de las características de algunos tipos de vesículas extracelulares
| Características | Exosomas | Ectosomas | Microvesículas | Cuerpos apoptóticos |
|---|---|---|---|---|
| Mecanismo de generación | Exocitosis de MVB | Brote de la membrana plasmática | Brote de la membrana plasmática | Liberación de vesículas de células apoptóticas |
| Tamaño | 40 - 100 nm a 50 - 100 nm b | 100 - 200 / 500 nm, según publicación b | 100 - 1000 nm a b | 0,8 - 5 μm a 1 - 5 μm / 50 -500 nm b |
| Composición lipídica | Enriquecidas en colesterol, esfingomielina y ceramida; contienen balsas lipídicas; exponen fosfatidilserina ceramida grande. | Enriquecidas en colesterol y diacilglicerol; exponen fosfatidilserina y ceramida. | Exponen fosfatidilserina. | ND |
| Marcadores proteicos | Tetraspaninas (CD81, CD63, CD9, CD61), Alix, LAMP1 y Tsg101; unión a anexina V | Integrinas, selectinas y ligando CD40; unión a anexina V, factores tisulares y marcadores específicos celulares | Unión a anexina V, contenido de ADN |
ND: no determinado
definida en GO
definida según la literatura
Basado en: ,, (Gene Ontology project, versión 2021-05-01)
Opciones de consulta y parámetros incluidos en EV-TRACK
| Opciones de consulta habilitadas en EV-TRACK | |
|---|---|
| Especie | múltiples: 12 mamíferas y 59 no mamíferas |
| Tipo de biofluido | sobrenadante de cultivo celular, plasma sanguíneo, suero, orina, leche, semen, saliva, ascitis, fluido cerebroespinal, fluido de lavado broncoalveolar |
| Objetivo del estudio | biogénesis/clasificación, biomarcador, función, ómica y técnica |
| Método de separación | comercial, cojín de densidad (density cushion), gradiente de densidad, ultracentrifugación diferencial, filtración, inmunoafinidad, cromatografía de exclusión de tamaño, ultrafiltración, microfluidos |
| Método de análisis proteico | ELISA, citometría de flujo, microscopía inmunoelectrónica, proteómica, western blot |
| Método de análisis de partículas | fraccionamiento en flujo mediante campo de flujo asimétrico, microscopía de fuerza atómica, dispersión de luz dinámica, microscopía electrónica, citometría de flujo de alta resolución, análisis de rastreo de nanopartículas, detección de pulso resistivo sintonizable |
| Parámetros EV-METRIC: | proteína enriquecida en VE proteína no enriquecida en VE análisis cualitativo y cuantitativo |
| imágenes de microscopía electrónica gradiente de densidad densidad de VE | |
| especificaciones de ultracentrifugación especificaciones de anticuerpos preparación del lisado | |
| Parámetros experimentales relacionados con la caracterización de VE | |
| Análisis de proteínas | Proteínas enriquecidas en VE: análisis de tres o más proteínas enriquecidas en VE |
| Proteína no enriquecida en VE: evaluación, al menos, de una proteína no enriquecida en VE | |
| Características específicas del anticuerpo: clon del anticuerpo / número de referencia y dilución * | |
| Preparación de lisado: composición de la solución tampón de lisis o descomposición usada, o número de referencia para soluciones tampón de descomposición usadas * | |
| Análisis de partículas | Análisis cualitativo y cuantitativo: implementación de métodos cualitativos (por ejemplo: EM, AFM) y cuantitativos (por ejemplo: NTA, DLS, TRPS, citometría de flujo de alta resolución). Para el método cuantitativo, se espera informar la concentración de partículas. |
| Imágenes de microscopía electrónica: inclusión de una imagen de microscopía electrónica de campo amplio y de primer plano | |
| Parámetros experimentales relacionados con la separación de VE | |
| Gradiente de densidad: gradiente de densidad realizado al menos como validación si los resultados descritos se atribuyen a las VE | |
| Densidad de VE: reporte de la densidad obtenida de las VE | |
| Características específicas de ultracentrifugación: informe de RCF o fuerzas g, duración de los pasos de ultracentrifugación y tipo de rotor + | |
* Pueden considerarse "no aplicables", dependiendo de los métodos de caracterización implementados en un estudio en particular.
+ Pueden considerarse "no aplicables", dependiendo del método de separación implementado en un estudio particular. Información disponible en: http://evtrack.org/
Comparación de las recomendaciones de MISEV 2014 y de MISEV 2018
| Principales recomendaciones de MISEV 2014 | Actualización en 2018 | ||
|---|---|---|---|
| Aislamiento / purificación de VE | No existe un único método de aislamiento óptimo, así que elija en función de las aplicaciones posteriores y la pregunta científica. |
Alta recuperación, baja especificidad: estuches de precipitación basados en polímeros, filtros de centrífuga con cut-off de bajo peso molecular sin pasos adicionales de separación, y ultracentrifugación de alta velocidad sin pasos adicionales de separación Recuperación intermedia, especificidad intermedia: ultracentrifugación diferencial con tiempos y velocidades intermedios incluyendo o no pasos de lavado, cromatografía de exclusión por tamaño, filtros de centrífuga de alto peso molecular como paso inicial, columnas de afinidad de membrana y filtración de flujo tangencial Baja recuperación, alta especificidad: filtración, gradiente de densidad, afinidad | |
| Informe todos los detalles de los métodos para permitir la reproducibilidad. | Depositar los detalles experimentales con EV-TRACK. Esta base de conocimientos facilita la presentación de informes sobre métodos. | ||
| Algunos protocolos, incluidos los asociados con estuches comerciales, pueden generar poblaciones de VE unidas o mezcladas con los componentes introducidos. Al realizar experimentos funcionales, incluir controles de procedimiento y aumentar la separación de las VE | |||
| Caracterización de VE |
Caracterización general. Mostrar: |
a) Mínimo tres marcadores proteicos positivos de VE, incluido al menos uno transmembrana /proteína unida a lípidos, y una proteína citosólica b) Al menos un marcador de proteína negativo |
Categorías adicionales de proteínas por considerar para la caracterización: a) marcadores proteicos positivos de VE, asociados a la membrana y al citosol b) marcadores proteicos negativos (control de pureza) c) marcadores específicos de un subtipo de VE d) proteínas extracelulares solubles con actividad funcional |
| Caracterizacion de vesiculas individuales. Utilice dos técnicas diferentes y complementarias, como: |
a) microscopia electronica o de barrido por sonda (mostrar tanto campo amplio como cercano) b) seguimiento de partículas individuales | ||
| Describir cuantitativamente tanto la fuente como la preparación de VE | |||
| Análisis topológico de los componentes asociados con las VE, al menos para aquellos con una función dada asociada con VE | |||
| Actividad biológica asociada a VE |
Debería incluir: a) Estudios de dosis-respuesta | Adicional: comparación cuantitativa de la actividad del medio condicionado o biofluido 1) antes, 2) después de la eliminación de las VE, y 3) de las VE en sí, teniendo en cuenta que la fracción de VE puede incluir materiales aislados concomitantemente o contaminantes. Control sugerido adicional: comparación cuantitativa de la actividad de los subtipos de VE deseados contra los "descartados" | |
| b) Controles negativos o background del proceso para descartar la influencia de los componentes del suero u otros posibles contaminantes | Para los biofluidos, controles negativos de las funciones asociadas con la enfermedad = fluidos de donantes sanos, sin tratar o de otro tipo adecuado | ||
|
c) Controles para evaluar la influencia de componentes solubles o macromoleculares no-VE * c-i) Gradientes de densidad u otro método para mostrar que la actividad es intrínseca a la VE, no solo asociada c-ii) Remoción de VE para reducir la actividad c-iii) Marcación de VE o celular (ej.: marcado fluorescente, con interpretación cuidadosa) | Realizar ensayos funcionales después de separaciones rigurosas, comparando las fracciones VE y no VE para identificar qué proporción de actividad está asociada con cada fracción (en caso de que no sean VE) | ||
Una de estas opciones ,