| Literature DB >> 28863829 |
L Torre-Fuentes1, L Moreno-Jiménez2, V Pytel2, J A Matías-Guiu2, U Gómez-Pinedo2, J Matías-Guiu2.
Abstract
INTRODUCTION: Experimental animal models constitute a useful tool to deepen our knowledge of central nervous system disorders. In the case of multiple sclerosis, however, there is no such specific model able to provide an overview of the disease; multiple models covering the different pathophysiological features of the disease are therefore necessary. DEVELOPMENT: We reviewed the different in vitro and in vivo experimental models used in multiple sclerosis research. Concerning in vitro models, we analysed cell cultures and slice models. As for in vivo models, we examined such models of autoimmunity and inflammation as experimental allergic encephalitis in different animals and virus-induced demyelinating diseases. Furthermore, we analysed models of demyelination and remyelination, including chemical lesions caused by cuprizone, lysolecithin, and ethidium bromide; zebrafish; and transgenic models.Entities:
Keywords: Demyelination; Desmielinización; Encefalitis alérgica experimental; Esclerosis múltiple; Experimental allergic encephalitis; Experimental models; Mielina; Modelos experimentales; Multiple sclerosis; Myelin; Remielinización; Remyelination
Mesh:
Substances:
Year: 2017 PMID: 28863829 PMCID: PMC7115679 DOI: 10.1016/j.nrl.2017.07.002
Source DB: PubMed Journal: Neurologia (Engl Ed) ISSN: 2173-5808
Figura 1Esquema de inducción en los modelos in vivo. A) Inducción en los modelos autoinmunes y/o inflamatorios. La inducción se realiza por la aplicación del agente inmunoestimulante por vía intramuscular o subcutánea. Una vez iniciado el estadio inflamatorio, se observa un incremento de los niveles de citoquinas proinflamatorias, linfocitos T y microglía activada, provocando a su vez generación de especies reactivas de oxígeno (ROS) y daño en los oligodendrocitos y la mielina, además de provocar una gliosis reactiva y alteración de la pared capilar, generando edema. Transcurrido este estadio, en el proceso regenerativo la cantidad de células activadas (astrocitos y microglía) disminuyen y se observa una migración de progenitores oligodendrogliales, principalmente desde el cuerpo calloso (CC) o la zona subventricular (SVZ), para sustituir las células afectadas e iniciar la remielinización. B) Inducción en los modelos de desmielinización. La inducción se realiza por la aplicación de un agente químico o tóxico por varias vías: oral (dieta), local (intracerebral), intramuscular o subcutánea. Una vez administrado y ya en torrente sanguíneo, el agente tóxico en contacto con los axones produce degeneración mielínica, provocando un microambiente que de forma secundaria induce la activación de células de microglía, generación de ROS, así como la liberación de citoquinas inflamatorias y gliosis reactiva, teniendo como punto final la pérdida de las vainas de mielina y de las células generadoras de mielina (oligodendrocitos). Transcurrido este estadio, en el proceso regenerativo la cantidad de células activadas (astrocitos y microglía) disminuyen y se observa una migración de progenitores oligodendrogliales, principalmente desde el CC o la SVZ, para sustituir las células afectadas e iniciar la remielinización.
Características principales de los diferentes modelos in vivo, ventajas y desventajas
| Modelo | Especie | Agente químico | Remielinización espontánea | Ventajas | Desventajas |
|---|---|---|---|---|---|
| EAE | Rata | MOG | No | –Patología remitente-recurrente similar a EM | –No sirve para estudiar la remielinización |
| Ratón | MBP | ||||
| PLP | |||||
| Macaco Rhesus | |||||
| Marmoset | |||||
| TMEV | Ratón | No | –Válido para testar estrategias terapéuticas específicas del modelo viral de EM | –Difícil determinar qué proporción está causada por la actividad del virus o por la respuesta inflamatoria | |
| SFV | Ratón | Sí | –Válido para examinar mecanismos de desmielinización-remielinización inducidos viralmente | –Depende del sistema inmune del animal | |
| -Los ratones no sucumben a la enfermedad neurológica | |||||
| JME | Macaco japonés | Limitada | –Espontáneo | –No existe modelo experimental | |
| MHV | Ratón | Sí | –Buen modelo para imitar el posible desencadenamiento natural de la EM | -No está claro cómo el virus infecta y se expande en el SNC del animal | |
| -Mejor modelo que la EAE para estudiar la discapacidad progresiva | |||||
| Lisolecitina | Rata | Lisolecitina | Sí | –Lesión localizada | –Técnica muy compleja |
| Ratón | |||||
| Cuprizona | Rata | Cuprizona | Sí | –Tiempo preciso de desmielinización-remielinización | –No válido para el estudio de características funcionales de algunas cepas |
| Ratón | –No inflamatoria | ||||
| –Específica de oligodendrocitos | |||||
| Bromuro de etidio | Rata | BrEt | Sí | –Lesión localizada | –Técnica compleja |
BrEt: bromuro de etidio;EAE: encefalitis alérgica experimental; JME: Japanese macaque encephalomyelitis; MBP: proteína básica de la mielina; MHV: Mouse Hepatitis (corona) virus; MOG: glicoproteína oligodendroglial de la mielina; PLP: péptido de la proteína proteolipídica; SFV: Semliki forest Virus; TMEV: Theiler's murine encephalomyelitis virus.