Literature DB >> 35405782

[Prognostic significance of IKZF1 gene deletions in patients with B-cell acute lymphoblastic leukemia].

B Q Tang1, Z H Cai1, D N Lin2, Z X Wang1, X J Liang1, Z P Fan1, F Huang1, Q F Liu1, H S Zhou1.   

Abstract

Objective: This study aimed to investigate the prognostic significance of IKZF1 gene deletion in patients with acute B lymphoblastic leukemia (B-ALL) .
Methods: The clinical data of 142 patients with B-ALL diagnosed in Nanfang Hospital between March 2016 and September 2019 were analyzed.
Results: IKZF1 deletion was found in 36.0% of the 142 patients with B-ALL, whereas exon 4-7 deletion was found in 44.0% . White blood cell counts were higher in patients with the IKZF1 deletion (52.0% and 28.3% , P=0.005) ; these patients also experienced worse effects of mid-term induction therapy (40.0% and 70.7% , P<0.001) and had a higher proportion of Philadelphia chromosome-positive (52.0% and 21.7% , respectively, P<0.001) . Univariate analysis revealed that the 3-year overall survival rate (OS) and event-free survival rate (EFS) in the IKZF1 deletion group were significantly lower than the IKZF1 wild-type group [ (37.1±7.3) % vs (54.7±5.4) % , (51.8±7.9) % vs (73.9±4.7) % ; P=0.025, 0.013, respectively]. Multivariable analysis showed that harboring IKZF1 deletion was an adverse factor of EFS and OS (HR=1.744, 2.036; P=0.022, 0.020, respectively) . Furthermore, the IKZF1 deletion/chemotherapy group had significantly lower 3-year OS, EFS, and disease-free survival rates than other subgroups. In the IKZF1 deletion cohort, allo-hematopoietic stem cell transplantation (HSCT) significantly improved OS and EFS compared to non-allo-HSCT[ (67.9±10.4) % vs (31.9±11.0) % , (46.6±10.5) % vs (26.7±9.7) % ; P=0.005, 0.026, respectively].
Conclusion: Pediatric-inspired chemotherapy was unable to completely reverse the negative effect of IKZF1 deletion on prognosis. Pediatric-inspired regimen therapy combined with allo-HSCT, in contrast, significantly improved the overall prognosis of IKZF1 deletion B-ALL.

Entities:  

Keywords:  Allogeneic hematopoietic stem cell transplantation; Gene, IKZF1; Leukemia, B-cell, acute

Mesh:

Substances:

Year:  2022        PMID: 35405782      PMCID: PMC9072070          DOI: 10.3760/cma.j.issn.0253-2727.2022.03.009

Source DB:  PubMed          Journal:  Zhonghua Xue Ye Xue Za Zhi        ISSN: 0253-2727


IKZF1基因编码锌指转录因子IKAROS,是最早被识别的淋系转录因子之一,负责调控造血干细胞向成熟淋巴细胞分化[1]–[2]。IKAROS蛋白含有6个锌指结构,其中N端的4个锌指结构位于维持肿瘤抑制和转录调控所必需的关键DNA结合域[3]–[4];研究发现,编码上述关键锌指结构的IKZF1基因的大片段缺失或突变与急性淋巴细胞白血病(ALL)不良的预后密切相关。在儿童ALL中,IKZF1基因缺失发生率约为15%,在成人ALL中为30%~40%,在70%以上的Ph染色体阳性ALL中检测到IKZF1基因缺失或序列突变[5]–[8]。尽管IKZF1基因缺失或突变已作为预后分层的重要指标,但由于缺乏特异性靶向药物和治疗方法,目前基于IKZF1缺失/突变指导的治疗策略尚不清楚。本研究中,我们分析了本中心142例B-ALL患者的IKZF1基因缺失情况及其临床特征,并重点分析了异基因造血干细胞移植(allo-HSCT)对该类型患者生存的影响,探索基于IKZF1基因状态指导的治疗方案。

病例与方法

1. 研究对象:对2016年3月至2019年9月就诊于我院血液科的142例初诊B-ALL患者的临床资料进行回顾性分析。所有患者均经细胞形态学、免疫学、细胞遗传学和分子生物学(MICM)检测,诊断分型采用WHO2016年关于急性白血病的诊断标准。白血病细胞免疫分型及微小残留病(MRD)采用流式细胞术(FCM)检测,诱导化疗第14、24及巩固治疗前检测3次MRD水平,分别计为MRD1、MRD2、MRD3。将患者按IKZF1状态和治疗情况分为四组:IKZF1缺失/单纯化疗组(A组)、IKZF1缺失/移植组(B组)、IKZF1非缺失/单纯化疗(C组)、IKZF1非缺失/移植(D组),比较分析患者的生存情况。本研究经南方医科大学南方医院伦理审查委员会批准(批件号:NFEC-2018-002),并取得所有参与者的知情同意。 2. 跨越断裂点PCR检测IKZFl基因外显子缺失:参考Caye等[9]的研究,分别在IKZF1基因第2、4、7、8号外显子上设计基因组上、下游引物。Δ2-7及Δ2-8于第2号外显子上均存在缺失,但断裂位点不一致,故上述两种突变的上游引物需单独设计。突变上游引物命名为F.2a(5′-CAACAAGTGACCCATCCTTTG-3′)、F.2b(5′-CTCCTCTAATCTTTGGACTTGTGA-3′)、F.4(5′-GGAGTCTGTGAAGGTCACACC-3′),下游引物分别命名为R-7(5′-AAAGAACCCTCAGGCATTCA-3′)、R-8(5′-GTCTCGGCATACAGGGAAGA-3′)。引物及其合成产物的正确性,均在美国国立生物技术信息中心进行blast验证。引物以PAGE纯化,5′端加入FAM荧光基团修饰,3′端加入TAMRA荧光基团修饰,吸光度(A)值为2。按QIAamp DNA Micro Kit说明书提取基因组DNA。扩增反应参照ABI 7500型定量PCR仪使用说明书,设置反应程序,并收集荧光信号,自动设置Ct值,软件中相应出现标准扩增曲线且Ct值<36定义为阳性结果。 3. 治疗方案:所有ALL患者接受强化培门冬酶的儿童样方案PDT-ALL-2016[10]。诱导前接受地塞米松进行预治疗,接着予VICLP(长春新碱、去甲氧柔红霉素、培门冬酶、泼尼松)方案进行诱导缓解和CAM(环磷酰胺、阿糖胞苷和6-巯基嘌呤)模块治疗;明确Ph染色体阳性者诱导治疗第14天起加用酪氨酸激酶抑制剂治疗(达沙替尼 100 mg 每日1次),CD20阳性(流式细胞术免疫分型CD20阳性细胞比例>20%)患者加用利妥昔单抗(诱导期:375 mg/m2,每周1次,巩固期:375 mg/m2,每周2次)。诱导缓解后予阿糖胞苷、甲氨蝶呤、环磷酰胺联合培门冬酶巩固化疗模块1~3进行巩固治疗;综合患者诊断时IKZF1基因缺失等危险因素和基于不同时间点MRD评价的治疗反应进行危险分层,高危组患者进入allo-HSCT路径,结合患者意愿及供者情况决定是否选择allo-HSCT。移植预处理方案和GVHD防治根据本单位既定方案进行[11]。 4. 随访:采用查阅患者住院病历、门诊定期随访和电话随访,随访截止日期为2020年10月30日。无事件生存(EFS)期定义为自诊断到第1次事件(包括持续不缓解、复发、完全缓解期间因其他原因死亡)的时间。总生存(OS)期定义为自确诊至患者死亡或随访截止的时间。无病生存(DFS)期定义为完全缓解至复发、随访截止或患者死亡的时间。 5. 统计学处理:数据使用 SPSS 22.0 统计学软件进行分析,正态分布计量资料采用±s表示,计数资料用例数、百分数表示,临床特征分析及比较使用卡方检验及方差分析,生存分析使用Kaplan-Meier生存曲线及Log-rank检验,多因素分析使用Cox回归模型。P<0.05为差异有统计学意义。

结果

1. 伴IKZF1基因缺失B-ALL患者临床及实验室特征:IKZF1基因缺失患者的临床资料见表1,50例(35.2%)患者检出IKZF1基因缺失,其中22例检测到4~7号外显子缺失,10例检测到2~7号外显子缺失,3例检测到2~8号外显子缺失,2例检测到4~8外显子缺失,13例为混合外显子缺失。与非缺失患者相比,IKZF1缺失组患者初诊时WBC≥30×109/L患者比例更高(52.0%对28.3%,P=0.005)、早期诱导MRD转阴率更低(MRD1,40.0%对70.7%,P<0.001)以及Ph染色体阳性比例更高(52.0%对21.7%,P<0.001)。
表1

IKZF1缺失急性B淋巴细胞白血病患者临床及实验室特征

特征非IKZF1缺失(92例)IKZF1缺失(50例)检验值P
年龄[岁,M(范围)]31(16~59)32(17~51)0.268a0.605
性别(例,男/女)47/4526/240.0110.917
WBC≥30×109/L[例(%)]26(28.3)26(52.0)7.8660.005
LDH≥600 IU/L[例(%)]35(38.0)20(40.0)0.0520.858
CD20阳性[例(%)]29(31.5)18(36.0)0.2930.588
MRD1>1%[例(%)]27(29.3)30(60.0)12.667<0.001
MRD2>0.1%[例(%)]21(22.8)18(36.0)2.8220.093
MRD3>0.01%[例(%)]20(21.7)17(34.0)3.0350.081
首疗程完全缓解[例(%)]74(80.4)35(70.0)1.9770.160
Ph染色体阳性[例(%)]20(21.7)26(52.0)13.545<0.001

注:检验值中a为F值,其他均为χ2值;MRD1:化疗第14天微小残留病(MRD)水平;MRD2:化疗第24天MRD水平;MRD3:巩固治疗前MRD水平

注:检验值中a为F值,其他均为χ2值;MRD1:化疗第14天微小残留病(MRD)水平;MRD2:化疗第24天MRD水平;MRD3:巩固治疗前MRD水平 2. 按IKZF1状态和治疗情况分组的四组患者基线临床资料分析:142例患者中,男73例(51.4%),女69例(48.6%),中位年龄31(18~64)岁。四组在性别、年龄、初诊时WBC、血清 LDH水平、髓外浸润、CD20表达、诱导期MRD水平、首疗程缓解情况、合并Ph染色体阳性等基线情况比较见表2。四组比较,初发WBC、诱导早期MRD阳性(MRD1>1%)、伴Ph染色体阳性、复发和死亡患者比例的差异均有统计学意义(P值均<0.05)。
表2

四组急性B淋巴细胞白血病患者临床特征基线值比较

特征IKZF1缺失组
IKZF1非缺失组
检验值P
单纯化疗(24例)allo-HSCT(26例)单纯化疗(47例)allo-HSCT(45例)
年龄(岁,x±s32.3±8.329.7±6.333.2±8.730.1±7.91.654a0.180
性别(例,男/女)10/1416/1020/2727/184.7850.188
初诊WBC≥30×109/L[例(%)]14(58.3)12(46.1)14(29.8)12(26.7)8.7600.033
初诊LDH≥600 IU/L[例(%)]11(45.8)9(34.6)18(38.2)17(37.8)0.7170.869
CD20阳性[例(%)]9(37.5)9(34.6)14(29.8)15(33.3)0.4710.925
MRD1>1%[例(%)]12(50.0)18(69.2)13(27.7)14(31.1)14.7020.002
MRD2>0.1%[例(%)]7(29.2)11(42.3)9(19.1)12(26.7)4.5560.207
MRD3>0.01%[例(%)]7(29.2)10(38.5)11(23.4)9(20.0)3.2250.358
首疗程完全缓解[例(%)]18(75.0)17(65.4)38(80.9)36(80.0)2.6330.452
Ph染色体阳性[例(%)]12(50.0)14(53.8)11(23.4)9(20.0)13.7510.003
复发[例(%)]16(66.7)8(30.7)16(34.0)14(31.1)10.1640.017
死亡[例(%)]14(58.3)7(26.9)14(29.8)10(22.2)10.0850.018

注:检验值中a为F值,其他均为χ2值。allo-HSCT:异基因造血干细胞移植;MRD1:化疗第14天微小残留病(MRD)水平;MRD2:化疗第24天MRD水平;MRD3:巩固治疗前MRD水平

注:检验值中a为F值,其他均为χ2值。allo-HSCT:异基因造血干细胞移植;MRD1:化疗第14天微小残留病(MRD)水平;MRD2:化疗第24天MRD水平;MRD3:巩固治疗前MRD水平 3. 生存分析:四组患者生存比较结果见图1,A组3年EFS、OS、DFS率均明显低于其他三组,累积复发率(CIR)明显高于其他三组。IKZF1缺失患者中移植组的3年OS率及EFS率分别为(67.9±10.4)%、(46.6±10.5)%,非移植组的3年OS率及EFS率分别为(31.9±11.0)%、(26.7±9.7)%,差异均有统计学意义(P值分别为0.005、0.026)。
图1

四组急性B淋巴细胞白血病患者总生存(A)、无事件生存(B)、无病生存(C)、累积复发(D)曲线比较

A组:IKZF1缺失/单纯化疗组;B组:IKZF1缺失/移植组;C组:IKZF1非缺失/单纯化疗组;D组:IKZF1非缺失/移植组

四组急性B淋巴细胞白血病患者总生存(A)、无事件生存(B)、无病生存(C)、累积复发(D)曲线比较

A组:IKZF1缺失/单纯化疗组;B组:IKZF1缺失/移植组;C组:IKZF1非缺失/单纯化疗组;D组:IKZF1非缺失/移植组 4. 影响B-ALL患者预后的单因素和多因素分析:对可能影响患者预后的相关因素进行单因素分析,发现初诊WBC、IKZF1缺失、Ph染色体阳性与预后相关(表3)。将单因素分析中P<0.05的因素纳入Cox回归模型进行多因素分析(表4),发现IKZF1缺失、CD20阳性是影响患者EFS的独立危险因素。年龄>35岁、IKZF1缺失是影响患者OS的独立危险因素,移植是OS的独立保护因素。
表3

142例急性B淋巴细胞白血病患者预后单因素分析(%,±s)

因素例数EFS
OS
3年EFS率P3年OS率P
年龄0.1120.007
 <35岁9254.7±5.475.2±4.6
 ≥35岁5036.6±7.350.2±7.9
性别0.1010.211
 男7354.5±6.169.8±5.8
 女6942.1±6.363.0±6.1
初诊WBC(×109/L)0.0070.077
 <309056.4±5.573.7±4.7
 ≥305235.4±6.853.9±7.8
血清LDH(IU/L)0.7580.985
 <6008746.0±5.667.2±5.2
 ≥6005553.3±6.965.5±7.1
IKZF1基因0.0250.013
 缺失5037.1±7.351.8±7.9
 非缺失9054.7±5.473.9±4.7
CD20表达0.0220.449
 阴性9555.5±5.469.1±5.1
 阳性4734.7±7.261.3±7.5
Ph染色体0.0410.044
 阴性9633.4±7.574.6±4.5
 阳性4655.5±5.350.7±8.5
MRD1水平0.2110.615
 ≤1%8553.2±5.168.5±5.3
 >1%5741.7±6.863.8±6.8
MRD2水平0.2310.400
 ≤0.1%10350.9±5.267.8±5.0
 >0.1%3942.7±8.163.3±7.8
MRD3水平0.4910.615
 ≤0.01%10550.0±5.168.5±5.3
 >0.01%3744.3±8.463.8±6.8
首疗程完全缓解0.5370.989
 是10949.9±5.065.8±4.9
 否3344.4±8.868.9±8.2
移植0.1270.038
 是7144.6±6.158.9±6.2
 否7152.7±6.274.2±5.5

注:EFS:无事件生存;OS:总生存;MRD1:化疗第14天微小残留病(MRD)水平;MRD2:化疗第24天MRD水平;MRD3:巩固治疗前MRD水平

表4

142例急性B淋巴细胞白血病患者预后多因素分析

因素EFS
OS
HR(95%CIPHR(95%CIP
年龄>35岁1.365(0.837~2.226)0.2121.875(1.031~3.409)0.039
WBC≥30×109/L1.423(0.856~2.366)0.1741.268(0.681~2.361)0.453
IKZF1基因缺失1.744(1.082~2.812)0.0222.036(1.119~3.705)0.020
CD20阳性1.725(1.074~2.770)0.0241.325(0.718~2.445)0.368
MRD1>1%1.200(0.589~2.443)0.6150.971(0.380~2.485)0.951
MRD2>0.1%1.353(0.810~2.259)0.2481.403(0.734~2.683)0.305
MRD3>0.01%1.718(0.642~4.596)0.2811.152(0.428~3.102)0.780
伴Ph染色体阳性1.127(0.625~2.031)0.6921.070(0.505~2.268)0.850
移植0.637(0.397~1.023)0.0620.515(0.270~0.981)0.044

注:EFS:无事件生存;OS:总生存;MRD1:化疗第14天微小残留病(MRD)水平;MRD2:化疗第24天MRD水平;MRD3:巩固治疗前MRD水平

注:EFS:无事件生存;OS:总生存;MRD1:化疗第14天微小残留病(MRD)水平;MRD2:化疗第24天MRD水平;MRD3:巩固治疗前MRD水平 注:EFS:无事件生存;OS:总生存;MRD1:化疗第14天微小残留病(MRD)水平;MRD2:化疗第24天MRD水平;MRD3:巩固治疗前MRD水平

讨论

IKZF1基因位于染色体7p12.2,编码IKAROS蛋白,是造血过程中的重要转录因子,主要调控T和B淋巴细胞的正常发育分化。IKZF1基因缺失在高危B-ALL发病机制中扮演重要角色,参与B细胞分化阻滞、代谢重编程、白血病微环境黏附、疾病的复发和耐药等过程。由于目前缺乏特异性靶向药物,探索IKZF1缺失B-ALL的治疗策略有重要意义[12]–[14]。 近年来,随着研究深入,IKZF1基因缺失对B-ALL的诱导缓解、疾病复发和长期生存等重要影响逐渐被阐明。美国St Jude儿童医院Mullighan团队[7]采用高通量基因组测序分析,分别在两个独立队列中进行检测和验证,证实IKZF1缺失或突变与B-ALL不良预后有重要关联;德国GMALL研究组[15]2017年进一步研究报道,外显子大片段缺失导致IKZF1基因功能丧失,IKZF1基因的突变负荷与预后密切相关,高突变负荷与预后不良相关;与国外研究结果相似,我们在本研究中对IKZF1缺失ALL患者的临床特征进行了分析,发现IKZF1缺失患者的早期诱导效果不佳,首次化疗完全缓解率低,生存分析显示IKZF1缺失组较非缺失组OS和EFS期明显缩短。 由于目前尚无特异性针对IKZF1缺失的靶向治疗药物,IKZF1缺失患者单纯化疗预后不佳[16],包括免疫治疗都不能完全纠正IKZF1缺失的不良预后[17],因此,探索联合策略改善IKZF1缺失高危B-ALL预后具有重要意义。目前多项研究报道了allo-HSCT可以改善IKZF1缺失ALL的预后。Dhédin等[18]报道了206例前体B细胞ALL患者的预后,allo-HSCT可以使IKZF1缺失患者获益(HR=0.42)。苏州大学附属第一医院血液科分析了164例成人B-ALL患者,结果显示allo-HSCT可以改善IKZF1突变尤其是 Ph染色体阳性ALL的OS和LFS[19];但单纯移植是否能完全克服IKZF1不良预后,目前尚不完全清楚。 本研究中我们采用了PDT-ALL-2016的儿童样化疗方案,相比IKZF1缺失组,非IKZF1缺失组不论是否接受allo-HSCT,整体生存达到了70%~80%,显示儿童样化疗方案PDT-ALL-2016使成人B-ALL患者获得了比较理想的生存;但在IKZF1缺失亚组,IKZF1缺失/单纯化疗组对比其他三组预后明显较差,表明仅使用儿童样化疗,不足以克服IKZF1缺失带来的不良影响。在IKZF1缺失患者中,非移植组的预后显著差于移植组,提示在现阶段的治疗方案下,allo-HSCT仍是可以使IKZF1缺失ALL患者获益的首要治疗手段。相比国内外已有报道,本研究针对IKZF1缺失高危B-ALL采用了儿童样化疗方案联合allo-HSCT的治疗策略,初步结果显示,联合策略有可能改善IKZF1基因缺失的高危B-ALL的不良预后。但本研究仅为单中心分析,对于allo-HSCT治疗后长期的不良事件及存活情况还需进行后续深入研究。 综上所述,IKZF1基因缺失B-ALL患者整体预后差,儿童样化疗方案联合allo-HSCT有望克服IKZF1基因缺失对预后的不良影响,该结论有待多中心数据的进一步验证;同时,针对IKZF1缺失分子机制的揭示和靶向药物的研发,将进一步改善IKZF1缺失B-ALL的临床预后。
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8.  The IKAROS interaction with a complex including chromatin remodeling and transcription elongation activities is required for hematopoiesis.

Authors:  Stefania Bottardi; Lionel Mavoungou; Helen Pak; Salima Daou; Vincent Bourgoin; Yahia A Lakehal; El Bachir Affar; Eric Milot
Journal:  PLoS Genet       Date:  2014-12-04       Impact factor: 5.917

9.  Superenhancer reprogramming drives a B-cell-epithelial transition and high-risk leukemia.

Authors:  Yeguang Hu; Zhihong Zhang; Mariko Kashiwagi; Toshimi Yoshida; Ila Joshi; Nilamani Jena; Rajesh Somasundaram; Akinola Olumide Emmanuel; Mikael Sigvardsson; Julien Fitamant; Nabeel El-Bardeesy; Fotini Gounari; Richard A Van Etten; Katia Georgopoulos
Journal:  Genes Dev       Date:  2016-09-01       Impact factor: 11.361

Review 10.  The many faces of IKZF1 in B-cell precursor acute lymphoblastic leukemia.

Authors:  René Marke; Frank N van Leeuwen; Blanca Scheijen
Journal:  Haematologica       Date:  2018-03-08       Impact factor: 9.941

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