×
No keyword cloud information.
嵌合抗原受体T细胞免疫疗法(CAR-T)治疗复发/耐药的B细胞急性淋巴细胞白血病(B-ALL)有效率达70%~90%[1 ]–[4 ]。但部分白血病患者因为肿瘤负荷高、淋巴细胞低等原因,不能采集到足够的自体T淋巴细胞而失去CAR-T治疗的机会。另一方面,同种异基因T细胞容易获得、无肿瘤细胞污染,初步研究发现在异基因造血干细胞移植(allo-HSCT)后,应用供者来源的CAR-T细胞治疗,疗效好、移植物抗宿主病(GVHD)发生率低[5 ]–[7 ]。但在移植前应用allo-CAR-T的经验尚缺乏。我们应用同一供者异基因CAR-T细胞(CD19-CAR-T)细胞输注序贯造血干细胞移植治疗2例B-ALL患者,报告如下。
病例资料
例1,女,3岁,于2011年9月因“面色苍白、下肢痛、发热”就诊。查骨髓原始幼稚淋巴细胞0.780,细胞表型:CD34(+)、CD10(−)、CD19(+)、CD38(+)。染色体核型:56, XX, 1X, dup(1)(q23q32), +4, +6, +9, +14, +19, +21, +mar1, +mar2, +mar3[20],诊断B-ALL,接受VDCP化疗后获得完全缓解(CR),之后巩固、维持治疗3年,一直处于完全缓解状态。维持治疗结束后,2015年1月流式细胞术检测骨髓微小残留病(MRD)为0.02%。之后接受3个疗程的再诱导治疗无效来我院。入院后查骨髓原始幼稚淋巴细胞0.650;染色体核型:46, XX, dup(1)(q21q32)[5 ]/46, XX[15 ];KRAS基因突变(+);未检出融合基因。患者一般状态差,合并肺感染、胃肠道出血。培养患者自体CAR-T细胞未获成功,采集患者母亲(HLA配型5/10相合)淋巴细胞,培养allo-CAR-T成功。在allo-CAR-T细胞输注前5~3 d,给予环磷酰胺400 mg·m−2·d−1+氟达拉滨30 mg·m−2·d−1预处理,0 d、+3 d、+7 d分别输注allo-CAR-T细胞0.54×106/kg、0.5×106/kg、0.9×106/kg。+1 d出现发热(38.5 °C),背部、颈部散在斑丘疹伴瘙痒。根据以前的经验[8 ],给予抗TNF-α抗体(依那西普)12.5 mg及退热处理。之后几天予广谱抗生素和抗真菌治疗,体温波动于37.0 °C~38.6 °C。生化检查无明显异常,IgA和IgM下降。+27 d复查骨髓原始幼稚淋巴细胞0.020,流式细胞术检测MRD 0.42%。+50 d血细胞恢复正常,复查骨髓原始幼稚淋巴细胞0.270,流式细胞术检测MRD 6.71%,allo-CAR-T细胞消失。采集自体淋巴细胞(基因检查确认)进行二次CAR-T治疗,采集的淋巴细胞数为0.97×109/kg,CD3+ T细胞占45%。+51 d给予环磷酰胺400 mg/m2和氟达拉滨30 mg/m2,+56 d再次输注自体CAR-T细胞0.16×106/kg,+64 d检出CAR-T细胞扩增,患者因反复发热接受依那西普治疗。+66 d患者体温恢复正常。+77 d复查骨髓为完全缓解(CR)、流式细胞术MRD阴性,染色体核型为46, XX。因为未找到其他合适供者,供者特异性抗体(DSA)阴性。在自体CAR-T细胞治疗后2个月行同一供者单倍型造血干细胞移植,移植后13 d粒细胞植入,17 d血小板植入。随访至移植后57个月,未发生急性GVHD和慢性GVHD,多次复查骨髓均为CR,完全供者嵌合。
例2,男,5岁,于2016年3月因发热入院,查骨髓原始幼稚淋巴细胞0.510,细胞表型为CD10(+)、CD19(+)、CD79a(+)、CD20部分(+),伴E2A-PBX1融合基因阳性。诊断B-ALL,给予VDLD方案化疗获得CR,E2A-PBX1融合基因仍阳性,之后予巩固治疗3个疗程达CR,流式细胞术MRD阴性,E2A-PBX1融合基因转为阴性。在经过2个疗程巩固治疗后形态学仍为CR,但E2A-PBX1融合基因转为阳性。2017年2月,骨髓原始幼稚淋巴细胞0.350,细胞表型:CD10(+)、CD19(+)、CD79a(+)、CD22(+)、CD38(+)、HLA-DR(+)、CD11b(+),CD34部分(+)、CD20部分(+);染色体核型:46, XY, add(7)(p22), add(9)(q34), der(19)t(1;19)(q21;p13)[2 ]/46, XY, add(1)(p36), add(3)(q21)[1 ]/46, XY, dic(4;10)(q31;q22), del(12)(q24), del(19)(p13)[1 ]/46, XY[3 ]。予FLAG等方案化疗多个疗程,骨髓原始幼稚细胞0.110~0.920,多次腰穿查脑脊液未见异常,期间2次培养自体CAR-T细胞均未获成功。2017年7月6日复查骨髓原始幼稚淋巴细胞0.960,采集患者胞兄(HLA 10/10相合)淋巴细胞培养allo-CAR-T细胞获得成功。在allo-CAR-T细胞输注前5~3 d行环磷酰胺200 mg·m−2·d−1+氟达拉滨30 mg·m−2·d−1预处理,在2017年7月12日输注allo-CAR-T 3×105/kg。+4 d患者出现发热(38.0 °C~39.5 °C),+6 d出现头痛、抽搐、一过性意识不清,予甘露醇和糖皮质激素,15 min后抽搐好转,仍嗜睡,查外周血多种细胞因子明显增高(白细胞介素2、白细胞介素6、白细胞介素8、肿瘤坏死因子)并检出allo-CAR-T,考虑细胞因子释放综合征(CRS),予托珠单抗联合抗生素治疗,发热、头痛、嗜睡逐渐好转,头颅MRI、脑脊液检查均未见异常。+14 d复查骨髓形态学为CR、流式细胞术MRD阴性,E2A-PBX1融合基因阴性。流式细胞术检测CAR-T细胞占CD3+细胞比例,输注CAR-T细胞后6 d达到峰值64.2%后逐渐下降,输注后9、15、22、35、49 d分别为58.34%、2.25%、19.60%、1.66%、0.10%。
因未找到其他合适供者,未检出DSA,CAR-T治疗后2个月行同一供者allo-HSCT,移植后16 d粒细胞、血小板植入,出现Ⅰ度皮肤GVHD,免疫抑制剂加量后好转。移植后1个月复查骨髓CR,E2A-PBX1融合基因阴性,嵌合率为完全供者嵌合。移植后2个月复查骨髓CR,流式细胞术MRD阴性,E2A-PBX1融合基因0.02%,免疫抑制剂减量。2周后复查骨髓CR、流式细胞术MRD阴性,E2A-PBX1融合基因0.11%,输注冻存供者CAR-T细胞4.1×105/kg,CAR-T细胞输注后21 d复查骨髓CR,流式细胞术MRD阴性,E2A-PBX1阴性。移植后5个月出现额部包块,PET检查提示髓外复发,复查骨髓未见异常,予局部放疗。移植后8个月复查骨髓CR,E2A-PBX1融合基因0.35%,再次输注供者CAR-T细胞4.1×105/kg。移植后9个月复查腹腔淋巴结肿大,活检病理显示髓外复发,复查骨髓为CR,E2A-PBX1融合基因0.02%,予局部放疗。移植后1年骨髓复发,予吉西他滨加依托泊苷化疗后未获缓解,移植后14个月死于B-ALL复发和肺感染。
讨论及文献复习
靶向CD19的自体CAR-T治疗难治/复发B-ALL取得了很好的临床疗效[1 ]–[4 ],但是增生明显减低、肿瘤负荷高的患者,很难采集够足够的自体T细胞,导致CAR-T培养失败。而异基因T细胞容易获得且无肿瘤细胞污染,但需要考虑安全性、有效性和GVHD情况。难治/复发的B-ALL患者,在CAR-T治疗获得CR后,一般需要桥接allo-HSCT以获得长期生存[9 ]。本组2例患者是同一供者allo-CAR-T输注桥接allo-HSCT的首次报告。
allo-CAR-T治疗最首要的顾虑是安全性问题,尤其是严重的GVHD、CRS、神经毒性等。以往研究显示,在allo-HSCT后输注供者来源CAR-T细胞,GVHD的发生率很低[5 ]–[7 ],[9 ]–[10 ]。Anwer等[6 ]的荟萃分析纳入7项研究中72例移植后输注供者来源allo-CAR-T的患者(急性淋巴细胞白血病50例、慢性淋巴细胞白血病9例、非霍奇金淋巴瘤13例),只有5例(6.9%)发生GVHD。本组2例患者也未观察到严重的急性GVHD表现。可能与CAR-T治疗前应用预处理和应用TNF-α抗体有关,另外,患者本身的免疫状态较差,可能也有一定关系。
CRS是CAR-T治疗一种常见的免疫介导反应,是由输入的T细胞激活引起大量细胞因子释放,招募和激活其他免疫细胞引起。第二代CD19-CAR-T细胞治疗B-ALL后CRS的发生率为30%~100%,3~4级CRS发生率为10%~30%,CRS一般发生于CAR-T细胞输注后1~14 d,可持续1~10 d[3 ],[9 ],[11 ]–[12 ]。CRS的危险因素包括肿瘤负荷、输注时的活动性感染、CAR-T细胞的输注量、CAR-T细胞的类型和预处理方案等[3 ]–[4 ],[13 ]。本组2例患者allo-CAR-T细胞输注后CRS反应均较轻且可控,提示allo-CAR-T后的CRS可接受,但例数较少,需要进一步观察。
另外,CAR-T治疗后神经系统毒性反应的发生率为12%~55%,首次出现神经系统症状的中位发生时间为CAR-T输注后6(1~34)d,症状持续时间一般为2~9 d,临床表现包括思维混乱、头痛、震颤、幻觉、异常运动甚至抽搐、视乳头水肿、昏迷等[1 ],[3 ]–[4 ]。本组2例患者中有1例出现头痛、抽搐、一过性意识不清,考虑与CAR-T细胞的神经毒性有关。
另外,输注CAR-T细胞前予化疗预处理可提高CAR-T细胞的植入率。目前最常用的预处理方案是氟达拉滨联合环磷酰胺,可减少肿瘤负荷并抑制宿主T淋巴细胞[3 ],[13 ]–[14 ]。本组2例患者输注CAR-T治疗前也采用了氟达拉滨联合环磷酰胺预处理方案,均耐受良好。
文献报告,自体CAR-T细胞输注后可持续存活1个月至数年。有研究显示,在移植后输注同一供者allo-CAR-T细胞患者的存活时间短于自体CAR-T细胞输注[15 ],但也有获得长期生存的报告[4 ],[6 ]–[7 ]。Hu等[10 ]报告allo-CAR-T扩增低于自体CAR-T细胞,不同于自体CAR-T细胞只靠CAR起作用,allo-CAR-T通过CAR和T细胞受体(TCR)起作用,但两个系统可能存在相互作用而影响CAR-T细胞的扩增[10 ],[16 ]。然而,对未予强烈预处理和移植的患者,allo-CAR-T是否能跨越HLA屏障,能否在宿主体内扩增和持续存在尚不清楚。本组2例患者在氟达拉滨联合环磷酰胺预处理后输注allo-CAR-T后在患者外周血中检出allo-CAR-T,提示allo-CAR-T可跨越HLA屏障。
CAR-T治疗后,部分患者可能获得长期生存,但对难治/复发B-ALL患者,大部分仍会出现白血病复发[9 ],[17 ]。为获得长期生存,可桥接allo-HSCT。allo-CAR-T输注后桥接同一供者allo-HSCT尚未见报道。理论上,输注allo-CAR-T,可能致敏。实际上,部分患者体内可能存在DSA,当存在高滴度的DSA时,可影响造血干细胞的植入[18 ]。本组2例患者均未检出DSA,因为找不到合适供者,最后均行同一供者allo-HSCT。移植后造血重建顺利,GVHD很轻。初步提示在allo-CAR-T治疗后桥接同一供者allo-HSCT治疗B-ALL是可行的,值得进一步研究。
16 in total
Authors: Yongxian Hu; Jiasheng Wang; Guoqing Wei; Jian Yu; Yi Luo; Jimin Shi; Wenjun Wu; Kui Zhao; Lei Xiao; Yanlei Zhang; Zhao Wu; Huijun Xu; Alex Hongsheng Chang; He Huang
Journal: Bone Marrow Transplant
Date: 2018-12-05 Impact factor: 5.483 Authors: Olalekan O Oluwole; Marco L Davila
Journal: J Leukoc Biol
Date: 2016-06-27 Impact factor: 4.962 Authors: Daniel W Lee; James N Kochenderfer; Maryalice Stetler-Stevenson; Yongzhi K Cui; Cindy Delbrook; Steven A Feldman; Terry J Fry; Rimas Orentas; Marianna Sabatino; Nirali N Shah; Seth M Steinberg; Dave Stroncek; Nick Tschernia; Constance Yuan; Hua Zhang; Ling Zhang; Steven A Rosenberg; Alan S Wayne; Crystal L Mackall
Journal: Lancet
Date: 2014-10-13 Impact factor: 79.321 Authors: James N Kochenderfer; Mark E Dudley; Robert O Carpenter; Sadik H Kassim; Jeremy J Rose; William G Telford; Frances T Hakim; David C Halverson; Daniel H Fowler; Nancy M Hardy; Anthony R Mato; Dennis D Hickstein; Juan C Gea-Banacloche; Steven Z Pavletic; Claude Sportes; Irina Maric; Steven A Feldman; Brenna G Hansen; Jennifer S Wilder; Bazetta Blacklock-Schuver; Bipulendu Jena; Michael R Bishop; Ronald E Gress; Steven A Rosenberg
Journal: Blood
Date: 2013-09-20 Impact factor: 22.113 Authors: Yinmeng Yang; M Eric Kohler; Christopher D Chien; Christopher T Sauter; Elad Jacoby; Chunhua Yan; Ying Hu; Kelsey Wanhainen; Haiying Qin; Terry J Fry
Journal: Sci Transl Med
Date: 2017-11-22 Impact factor: 17.956 Authors: Kevin A Hay; Laïla-Aïcha Hanafi; Daniel Li; Juliane Gust; W Conrad Liles; Mark M Wurfel; José A López; Junmei Chen; Dominic Chung; Susanna Harju-Baker; Sindhu Cherian; Xueyan Chen; Stanley R Riddell; David G Maloney; Cameron J Turtle
Journal: Blood
Date: 2017-09-18 Impact factor: 22.113 Authors: Waseem Qasim
Journal: Am J Hematol
Date: 2019-02-01 Impact factor: 10.047 Authors: Stefan O Ciurea; Kai Cao; Marcelo Fernandez-Vina; Piyanuch Kongtim; Monzr Al Malki; Ephraim Fuchs; Leo Luznik; Xiao-Jun Huang; Fabio Ciceri; Franco Locatelli; Franco Aversa; Luca Castagna; Andrea Bacigalupo; Massimo Martelli; Didier Blaise; Rupert Handgretinger; Denis-Claude Roy; Paul O'Donnell; Asad Bashey; Hillard M Lazarus; Karen Ballen; Bipin N Savani; Mohamad Mohty; Arnon Nagler
Journal: Bone Marrow Transplant
Date: 2018-01-15 Impact factor: 5.483 Authors: David Porter; Noelle Frey; Patricia A Wood; Yanqiu Weng; Stephan A Grupp
Journal: J Hematol Oncol
Date: 2018-03-02 Impact factor: 17.388 Authors: Robbie G Majzner; Crystal L Mackall
Journal: Nat Med
Date: 2019-09-09 Impact factor: 53.440
View more