Bi-allelic mutations in LRBA (from Lipopolysaccharide-responsive and beige-like anchor protein) result in a primary immunodeficiency with clinical features ranging from hypogammaglobulinemia and lymphoproliferative syndrome to inflammatory bowel disease and heterogeneous autoimmune manifestations. LRBA deficiency has been shown to affect vesicular trafficking, autophagy and apoptosis, which may lead to alterations of several molecules and processes that play key roles for immunity. In this review, we will discuss the relationship of LRBA with the endovesicular system in the context of receptor trafficking, autophagy and apoptosis. Since these mechanisms of homeostasis are inherent to all living cells and not only limited to the immune system and also, because they are involved in physiological as well as pathological processes such as embryogenesis or tumoral transformation, we envisage advancing in the identification of potential pharmacological agents to manipulate these processes.
Bi-allelic mutations in LRBA (from Lipopolysaccharide-responsive and beige-like anchor protein) result in a primary immunodeficiency with clinical features ranging from hypogammaglobulinemia and lymphoproliferative syndrome to inflammatory bowel disease and heterogeneous autoimmune manifestations. LRBA deficiency has been shown to affect vesicular trafficking, autophagy and apoptosis, which may lead to alterations of several molecules and processes that play key roles for immunity. In this review, we will discuss the relationship of LRBA with the endovesicular system in the context of receptor trafficking, autophagy and apoptosis. Since these mechanisms of homeostasis are inherent to all living cells and not only limited to the immune system and also, because they are involved in physiological as well as pathological processes such as embryogenesis or tumoral transformation, we envisage advancing in the identification of potential pharmacological agents to manipulate these processes.
More than 400 genes have been reported to affect the immune system either quantitative and/or qualitatively and also, in a symptomatic manner
. Among them is included LRBA (Lipopolysaccharide-responsive and beige-like anchor protein); either homozygous or compound heterozygous mutations in this gene cause loss of LRBA protein expression, which is associated with a broad spectrum of clinical and immunological manifestations
. The first report on LRBA deficiency was performed in five patients from four consanguineous families with hypogammaglobulinemia, autoimmune manifestations and recurrent infections
.. Subsequently, several reports of individuals with LRBA deficiency have been published, who suffer from a wider spectrum of clinical manifestations including: increased susceptibility to infections, polyautoimmunity, lymphoproliferation and gastropathy, all associated or not with hypogamaglobulinemia
-
. Moreover, an asymptomatic individual has also been reported
.With regard to the immunological findings, T lymphocytes from patients with the LRBA deficiency presented with an increase in either starvation- or staurosporine-induced and controversially, a decrease in Fas-induced apoptosis (Staurosporine is a potent inhibitor of protein kinases and activator of caspases)
. Furthermore, a decrease in the expression of CTLA-4 (Cytotoxic T-Lymphocyte Antigen 4) was described in these cells, both in the surface membrane and intracellularly
. In B cells from patients, a decrease in the in vitro production of antibodies was observed, together with an increase in apoptosis and a defect in the starvation-induced autophagy
. Taken together, these studies suggest that LRBA is important for the humoral response, immune regulation and defense against infections, both for extracellular and intracellular microorganisms, influencing the survival and homeostasis of T and B cells.
LRBA: general characteristics
LRBA is located on chromosome 4q31.3 and comprises 750,839 bp along 58 exons. The protein contains 2,863 amino acids and has a molecular mass of (319 kDa (Fig. 1). Three different transcripts of 1344, 836 and 787 bp has been detected in different mice tissues
. Additionally, the expression of the LRBA messenger RNA (mRNA) increases 2-4 times after stimulation with lipopolysaccharide (LPS) in different cell lines
.
Figure 1
Schematic representation of LRBA and the coding protein. Human LRBA contains 750,839 bp spanning 58 exons. Its cytogenetic location is 4q31.3. The human LRBA protein comprises 2,863 amino acids and is composed of multiple domains. The predicted molecular mass is 319 kD.
This protein has different domains and among them, the BEACH domain (beige and Chediak-Higashi) is the most characterized. This domain, with (280 amino acids in length, is conserved in several proteins grouped overall as the BEACH domain containing proteins (BDCP)
, and is mostly located towards the C-terminal
,
. The function of this domain is unknown and the sequence does not show homology with any other protein in the human proteome database
,
. In addition to the BEACH domain, the BDCP shares the ConA-like domain (concanavalin A-like), PH (Pleckstrin homology) and WD40 (repeats of tryptophan and aspartic acid) domains. On the other hand, the domain DUF1088 (domain of unknown function 1088) is shared only by LRBA and its paralog neurobeachin, which may indicate specific functions of these two proteins not shared by other members of the BDCP.In addition to these domains, LRBA seems to contain a VHS domain (VPS (vacuolar protein sorting)-27, Hrs (hepatocyte growth factor-regulated tyrosine kinase sustrate) STAM (signal transducing adaptor molecule) domain)
.The possible functions of all these domains are explained in Table 1.
Table 1
General characteristics of the LRBA protein domains.
Domain
Characteristics
Reference
BEACH
It is present in proteins involved in vesicle trafficking, membrane dynamics and receptor signaling
12,13
PH
Interacts with phosphatidyl-inositol within biological membranes, hetero-trimeric G proteins and protein kinase C. This allows the appropriate targeting of proteins to different cellular compartments or the activation of signal transduction pathways.
54
WD40
Involved in signal transduction, cell cycle control and apoptosis. It allows transient protein-protein interaction or the assembly of protein complexes.
55
ConA-like
Participates in trafficking and classification of proteins along the secretory pathway
56
DUF1088
The function of this domain is unknown. However, a penta-arginine sequence located in the DUF1088 domain of NBEA was identified as a potential signal of nuclear localization
57
VHS
Located in the N-terminal portion of proteins associated with endocytosis and/or vesicular trafficking. It likely functions as an adapter domain that helps to locate proteins in the cell membrane or in membranes of the endocytic machinery
13
With respect to tissue-specific expression, transcripts of this protein have been observed mainly bone marrow, lymph nodes, spleen, fetal liver, placenta, kidney and pancreas by RT-PCR (Reverse transcription polymerase chain reaction) and qPCR (quantitative polymerase chain reaction)
. Remarkably, the LRBA expression is not limited to the immune system, and considerably increases in several cancer tissues
. These findings suggest that LRBA function is more related to basic cellular mechanisms of growth, development and survival. At the subcellular level, using a probe directed against the LRBABEACH domain, this protein has been observed in the cytosol, Golgi apparatus and some lysosomes in the LPS-stimulated murine macrophage cell line RAW264.7
. In addition, with the use of the electron microscopy, LRBA is observed in endoplasmic reticulum, plasma membrane and clathrin-associated endocytic vesicles in the same cell line
.
LRBA function
LRBA participates in vesicular trafficking and receptor recycling
CTLA-4 (Cytotoxic T-Lymphocyte Antigen 4) is a protein receptor located in the plasmatic membrane of activated T cells. It functions to regulate homeostasis and peripheral immunological tolerance through the inhibition of T cell activation, competing with the costimulatory molecule CD28 for the specific ligation of CD80 and CD86, which are expressed on the surface of antigen-presenting cells
. While CD28 resides mainly on the cell surface, CTLA-4 is located first in intracellular compartments such as Golgi apparatus, endosomes, secretory granules and lysosomes. The T cell receptor (TCR) stimulation promotes CTLA-4 trafficking from vesicular compartments to the cell membrane, however, once it is already in the membrane, this receptor is continuously endocytosed via clathrin-coated vesicles. After endocytosis, some CTLA-4 molecules are recycled to the cell membrane while others are rapidly degraded in lysosomal compartments
,
. CTLA-4 contains a small cytoplasmic tail with two tyrosine motifs at position Y201VKM and Y218FIP. Several intracellular proteins bind to the Y201VKM motif, including AP-1 and AP-2 (clathrin-associated adapter). AP-2 mediates the internalization of CTLA-4 from the cell surface to endosomes and lysosomal compartments whereas AP-1 regulates CTLA-4 trafficking from the Golgi apparatus to endosomal compartments and lysosomes for degradation
. In a recent study, it was demonstrated that LRBA is necessary for the vesicular trafficking of CTLA-4 towards the plasma membrane
. LRBA regulates the recycling of CTLA-4 from endosomes to the cell membrane supporting the maintenance of its intracellular levels for the immediate mobilization to the surface membrane, as this molecule is required. Thus, a deficiency of LRBA favors a rapid degradation of CTLA-4 in the lysosome compartments, with its concomitant decrease both intracellular and extracellularly
. This work also demonstrated that LRBA interacts through its ConA-like- and the PH-BEACH domains with the cytoplasmic tail of CTLA-4, specifically with the Y201VKM motif. Finally, the silencing of AP-1, but not AP-2 partially rescues the CTLA-4 loss in the LRBA deficient cells. These results suggest that LRBA blocks the trafficking of CTLA-4 to lysosomes, competing with AP-1 for binding to its specific binding motif
. Recent findings indicated that Foxp3 + CD4 + cells from LRBA-deficient mouse spleen cells also exhibit an intracellular decrease in CTLA-4
.Other study that demonstrates the LRBA role in vesicular trafficking is related to the epidermal growth factor receptor (EGFR). Dominant-negative LRBA mutants decreases the expression and phosphorylation of EGFR
. EGFR is a tyrosine kinase receptor that is expressed in a wide variety of tissues, interacting not only with EGF but also with TGF-β (Transforming growth factor-β), and other ligands. This induces the dimerization and trans-auto-phosphorylation of the receptor by recruiting proteins that activate signaling pathways necessary for the proliferation, differentiation, cell growth, migration and inhibition of apoptosis
. Similar to CTLA-4 in lymphocytes, the EGFR expression on the cell surface is regulated by clathrin-mediated endocytosis, which leads either to its degradation via the lysosome compartment or its recycling to the cell surface
,
. Defects in the vesicular trafficking of this receptor result in an aberrant localization, which enhances signaling, allowing the development of cancer
. Although it is still not known if LRBA and EGFR interact physically, it has been demonstrated that AP-2 facilitates endocytosis and trafficking of EGFR by the endocytic route
.Finally, LRBA deficient patients exhibited a decrease in apoptosis mediated by the death receptor Fas, as compared to healthy donors
. Fas receptor promotes apoptosis through the extrinsic pathway, after binding to Fas ligand (FasL). After this binding, a process of FasL internalization occur, similar to EGFR, which is crucial to trigger apoptosis
. To date, it is unknown whether LRBA-deficient patients exhibit alterations in the amount of FasL in the plasmatic membrane, but the increase in serum FasL in these patients could suggest that the LRBA deficiency may have an effect on FasL, similar to CTLA-4, regulating its trafficking either towards plasmatic membrane or lysosomes
.These evidences suggest that LRBA might be involved in the vesicular trafficking of other receptors in lymphocytes. In LRBA deficient mice, defects have been reported in the phosphorylation of ERK1/2 (extracellular signal-regulated kinases) and AKT in natural killer (NK) cells stimulated with anti-NKG2D or anti-NKp46 antibodies, with a significant decrease in the production of IFN-gamma by these cells after stimulation
. Although this study did not determine the expression levels of these receptors in LRBA-deficient mice, there is some evidence that the exposure to specific ligands induces the degradation of NKG2D and DAP10, the intracellular adapter molecule of this receptor in lysosomes
. This regulation might be mediated by clathrin
. It is not known if LRBA is involved in the intracellular trafficking of these receptors in NK cells. Likewise, considering that the LRBA deficiency leads to defects in antibody responses, it would be also important to consider whether this molecule modulates the expression and function of other receptors whose expression is modulated by vesicular compartments, especially in regard to B cells activation
.Despite these studies on the LRBA-mediated modulation of some cellular receptors, little is known about the intracellular pathways that this molecule employ to perform this function. This transport seems to be carried out by the recruitment of proteins in clathrin-coated vesicles, on which the receptors are removed to early endosomes and subsequently degraded by lysosomal enzymes or recycled to the cell surface
. AP-1 is considered necessary for this trafficking. The location of AP-1 in the Golgi apparatus and endosomes depends on its direct binding to Arf (ADP-ribosylation factor) -1 and specifically in recycling endosomes, to Arf-6, among other protein complexes
. As already mentioned, LRBA inhibits the degradation of CTLA-4 in lysosomes by competition with AP-1, which suggest that this protein is necessary for mobilization to these compartments
. However, the relationship of LRBA with the endosomal pathway is unclear. The recycling of receptors also depends on vesicular compartments, and the proteins this required, namely, Arf, enzymes such as phospholipase D and Rab proteins. Interestingly, a study conducted in Drosophila suggests a possible functional interaction between bchs (blue cheese), a member of the BEACH family, and Rab11
. These findings suggest that, as well as Rab11, Bchs could be involved in the regulation of vesicle trafficking.Therefore, studies quantifying the expression of the mentioned receptors in LRBA deficient cells (either by silencing or from patients) are needed. It would also be useful to use advanced microscopy techniques to investigate the location of LRBA in other organelles involved in this type of trafficking. In addition, studies of co-immunoprecipitation between LRBA and vesicular trafficking proteins, the use of drugs that block this trafficking or the implementation of negative dominant ARFs, phospholipase D or Rab, could expand our knowledge about the interaction of LRBA with other vesicular trafficking molecules and thus determine its relationship with the membrane expression of receptors such as EGFR, Fas or the activating receptors of NK cells, B cells or others in immune cells.
LRBA is a molecule involved in autophagy
Autophagy is a mechanism of lysosomal degradation by which the cell destroys damaged organelles and microorganisms and helps to recycle macromolecules. In this process, a double membrane of isolation or phagophore is formed near to the target, which is then elongated, surrounding it, to later mature with the assimilation of a cytosolic charge forming the autophagosome. For the maturation to be effective, the autophagosome must be fused with early or late endosomes forming a structure called amphisome
,
. Finally, the mature autophagosomes fuses with lysosomes to proceed with the degradation of its content by lysosomal proteases and hydrolytic enzymes
.Several of the genes homologous to LRBA are involved in autophagy. WDFY3 (WD and FYVE zinc finger domain containing protein 3) encodes a protein that colocalizes with autophagosome markers
,
. In addition, the PH-BEACH domain interacts with the p62 protein
. P62 is a protein located in the autophagosome formation sites and is associated with both LC3 (microtubule-associated protein 1A / 1B-light chain 3) and ubiquitinated proteins
,
,
. LC3 is a cytosolic protein that when conjugated with a phosphatidylethanolamine is recruited to the autophagosome membrane favoring the autophagic influx
. On the other hand, defects in the gene mauve (mv) in Drosophila, which is ortholog of LYST, affect the autophagosome function
.In immortalized B cells from patients with LRBA deficiency, a significant reduction in the autophagy influx in response to starvation, together with an increase in the Golgi apparatus area, accumulation of autophagosomes and the presence of centrioles is observed, in comparison with those cells from healthy individual
. These results suggest that the autophagy influx is impaired in the LRBA deficiency, a finding that was demonstrated by a deficient fusion of autophagosome to lysosomes in immortalized B cells from LRBA-deficient patients subjected to starvation
. However, what are the possible functions of LRBA in the autophagy influx? Considering that both, the cell surface receptor trafficking and autophagy need endocytic vesicles, and that LRBA is likely located in these vesicles, a possible hypothesis would be that LRBA facilitates fusion between autophagosomes and the late endosomes, and therefore, the formation of the amphisome. One of the markers of late endosomes is Rab7 and this molecule is required for the formation of amphisomas in CHO cells transfected with the dominant negative mutant of Rab7, T22N
. Another hypothesis is that, in the same manner as the CTLA-4 vesicular trafficking, also in the context of autophagy in lymphocytes, LRBA would compete with clathrin adapter proteins, regulating this process. This since molecules such as clathrin and its adapter proteins are also important for the autophagic influx
-
. On the other hand, in silico tools have predicted that LRBA interacts with LC3
.In an attempt to associate the defects in autophagy with the clinical characteristics found in LRBA deficiency individuals, it is important to bear in mind that one of the most common clinical manifestations among these individuals is the gastropathy, phenotypically expressed in many cases as Inflammatory Disease Intestinal (IBD) or IBD-like disease, a condition characterized by recurrent destructive inflammation in the intestinal tract
-
). An increase in the production of IL-1β in the interstitial mucosa has been implicated with uncontrolled inflammation in the course of this disease
. Macrophages derived from ATG16L1 (autophagy-related 16-like 1)-knockout mice present with a defect in autophagy and exhibit a high production of IL-1β after LPS stimulation
. Likewise, the polymorphism rs2241880 in ATG16L1 increased the production of IL-1β in peripheral blood mononuclear cells isolated from patients with IBD
. Autophagy can regulate the production of IL-1β through two pathways: in the absence of autophagy, defective mitochondria accumulate generating an increase in ROS (reactivating oxygen species) and releasing mitochondrial DNA into the cytoplasm, events that further activate the inflammosome, increasing the production of IL-1β
,
. On the other hand, the degradation of pro-IL-1β mediated by autophagy processes limits the substrate available for the inflammasome, thus regulating the activation of IL-1β
,
. Therefore, alterations in autophagy would impair this mechanism, increasing the levels of IL-1β and inducing inflammation. It is not known if the intestinal manifestations in LRBA deficient patients are mediated by an excessive activity of the inflammosome and exaggerated production of IL-1β.Microscopy studies with LRBA deficient cells are required to study the intracellular distribution of molecules such as Rab7 and LC3 after the autophagic influx. It would also be interesting to investigate if LRBA interacts physically with any of the Rab molecules involved in the different types of autophagy, by means of co-immunoprecipitation assays. The role of LRBA in inflamosome activity could be addressed by measuring the production of IL-1β in LRBA deficient phagocytic or intestinal epithelial cells or by determining the activity of active auto-inflammosome by means of redistribution of ASC (apoptosis-associated speck-like protein containing a caspase-recruitment domain), which is a protein that recruits the necessary caspases for the activation of the inflammosome.
LRBA participates in apoptosis.
In LRBA deficient patients’ immortalized B cells subjected to starvation, a significant increase in apoptosis is observed
. Additionally, in LRBA-knockdown HeLa cells exposed to ultraviolet light or staurosporine, a greater cleavage of PARP (Poly (ADP-ribose) polymerase) and caspase 3 are observed, events that are necessary to initiate the cascade of signaling that eventually leads to apoptosis
.Apoptosis is a type of programmed cell death to control development and growth. For long time, caspases have been considered as the proteases involved in the execution of the apoptosis program, and nowadays it is known that the partial destabilization of the lysosomal membrane, with the consequent release of hydrolytic enzymes, can initiate and execute apoptosis, byactivating caspases
,
. In germinal centers derived from tonsils, it is observed that B cell lysosomal destabilization contributes to apoptosis
. The induction of lysosomal damage in these cells resulted in the cleavage of caspase 8 and also of DNA, due to the increased activity of cathepsin B in the cytoplasm. Interestingly, it has been observed that p53 induces lysosomal destabilization
and the LRBA promoter is negatively regulated by p53
. p53 is a tumor suppressor gene that encodes a nuclear transcription factor, whose expression increases in response to damage, blocking the cell cycle either to facilitate DNA repair or to induce apoptosis
. It is possible to hypothesize that, p53 would induce lysosomal destabilization in the absence of LRBA, and therefore, trigger apoptosis in lymphocytes. However, the mechanism by which p53 induces lysosomal destabilization or how LRBA protects cells from apoptosis is up to date unknown.However, a complex crosstalk between autophagy and apoptosis exists, that is critical for cell fate. Under certain cellular conditions, autophagy can promote cell survival and prevent apoptosis
. For example, increased autophagy in cells deprived of nutrients or growth factors allows cell survival by inhibiting apoptosis. A suggested mechanism by which autophagy inhibits apoptosis is the sequestration of mitochondria damaged by the autophagosome, thus preventing the released mitochondrial cytochrome c to form a functional apoptosome in the cytoplasm
. However, in other conditions, autophagy may culminate in cell death, dependently or independently of apoptosis
. Additionally, there are several proteins that share a dual role in both apoptosis and autophagy
. These autophagic proteins positively or negatively regulate mitochondrial apoptosis directly or indirectly through the cleavage of proteases
. In the context of LRBA deficient cells, defective autophagy together with an increase in apoptosis has been demonstrated. It is not known if either alterations in the clearance of damaged mitochondria or an exaggerated cleavage of proteases are responsible for this cellular phenotype.Therefore, it is necessary to evaluate the quantity and integrity of the lysosomes in LRBA deficient immune cells. In addition, the kinetics of lysosomal destabilization could be estimated in relation to the kinetics of other apoptotic parameters such as mitochondrial instability, caspase-3 activation and DNA cleavage.
Conclusion
In the last decade, a great amount of new information has been generated about the association of LRBA with the immune system, its cellular localization and function. This has improve our understanding about their role in processes such as vesicular trafficking, autophagy and apoptosis. However, many questions remain to be answered. First, is LRBA located in the endomembrane system? Does LRBA form protein complexes with either Rab or Arf? Does LRBA modulate the traffic of receptors such as Fas, NKG2D or NKp46? There is evidence that LRBA prevents the degradation of CTLA-4 by competing AP-1 in human regulatory T lymphocytes, a protein that interacts with Arf1 and Arf6. In addition, the Bchs ortholog gene in Drosophila leads to Rab11-dependent vesicular trafficking. This raises the possibility that LRBA modulates several immune receptors by vesicle trafficking and, therefore, it is determinant in the normal development of the immune response.Secondly, although defects in LRBA lead to poor autophagy, what are the functions of this protein in these cell mechanism? What is its localization in autophagosome, amphisomes and autophagolysomomes? Does LRBA interact physically with autophagy-related molecules such as LC3, ATG or Rab7?, By studying vesicular trafficking and autophagy, we found a possible connection mediated by Rab7, which is needed for the fusion between late endosomes and the autophagolysosome, which might suggest that LRBA is required for the fusion between these two organelles.Third, can LRBA deficiency affect lysosomal stability and thereby trigger apoptosis? The interaction of LRBA with lysosomes has been described, however, the mechanism underlying its function in lysosomes have not yet been fully elucidated.Finally, the association between endosomal trafficking, autophagy, apoptosis in the context of the LRBA function have not yet been addressed. We propose a model for the function of LRBA in the CTLA-4 trafficking (Fig. 2). A complete understanding of the LRBA function also requires a detailed dissection of its structure. It is necessary to characterize the function of their domains and its interaction with other proteins in cellular homeostasis.
Figure 2
LRBA in the regulation of vesicular trafficking. CTLA-4 is a receptor located in the membrane of activated T lymphocytes. This receptor is internalized in clathrin-coated vesicles by its interaction with AP2. LRBA regulates the recycling of CTLA-4 from endosomes to the cell membrane, preventing its degradation in the lysosomal compartments. The appropriate autophagy influx also need the endocytic vesicles. LRBA is located in these vesicles and might interact with molecules not yet identified to facilitate fusion between the autophagosomes and the late endosomes.
New technologies of advanced microscopy, genetic editing such as CRISPR / Cas9 system or next-generation genomics tools, in the context of transcriptomes, proteomes, metabolomes and epigenomes would help to solve many of these questions to clarify the role of this protein and raise strategies for its regulation.
Introducción
Se han reportado más de 400 genes que afectan cuantitativa y/o cualitativamente y de manera sintomática el sistema inmune . Entre estos se encuentra LRBA (del inglés, Lipopolysaccharide-responsive and beige-like anchor protein); las mutaciones homocigotas o heterocigotas compuestas en este gen, causan pérdida de la expresión de la proteína LRBA, lo que se asocia a un amplio espectro de manifestaciones clínicas e inmunológicas . El primer reporte sobre la deficiencia deLRBA fue realizado, en cinco pacientes procedentes de cuatro familias consanguíneas con hipogamaglobulinemia, con manifestaciones autoinmunes e infecciones recurrentes, . Posteriormente se han publicado varios reportes de individuos con deficiencia de la proteína LRBA los cuales presentaron un espectro más amplio de manifestaciones clínicas que incluyeron: una mayor susceptibilidad a las infecciones, poliautoinmunidad, linfoproliferación y gastropatía, todo ello asociado o no a hipogamaglobulinemia - . También se reportó un individuo asintomático .Con relación a los hallazgos inmunológicos, se observó que los linfocitos T de pacientes con deficiencia deLRBA presentaron un aumento en la apoptosis inducida por inanición o estaurosporina (un potente inhibidor de las proteinas-cinasas y activador de las caspasas) y controversialmente, una disminución en la apoptosis inducida porFas . Además, se determinó en estas células una disminución en la expresión de CTLA-4 (del inglés Cytotoxic T-Lymphocyte Antigen 4), tanto en la membrana como a nivel intracelular . En los linfocitos B provenientes de pacientes se observó una disminución en la producción de anticuerpos in vitro, un incremento en la apoptosis y un defecto en la autofagia tras la inanición . En conjunto, estos estudios sugieren que LRBA es importante para la respuesta humoral, la regulación inmune y la defensa contra las infecciones, tanto de microorganismos extracelulares como intracelulares, influenciando la supervivencia y la homeostasis de los linfocitos T y B.
LRBA: características generales
LRBA está localizado en el cromosoma 4q31.3, posee un tamaño de 750,839 pb y está organizado en 58 exones. La proteína posee 2,863 aminoácidos con un peso aproximado de ~319 KDa (Fig. 1). En el ratón, se detectaron tres diferentes transcriptos de 1344, 836 y 787 pb que se expresan diferencialmente en los tejidos . Adicionalmente, la expresión del ARN mensajero (ARNm) de LRBA se incrementó entre dos y cuatro veces luego de la estimulación con lipopolisacárido (LPS) en líneas celulares .
Figura 1
Representación esquemática del LRBA y la proteína que codifica. El LRBA humano contiene 750,839 pb organizado en 58 exones. Su ubicación citogenética es 4q31.3. La proteína humana LRBA tiene 2,863 aminoácidos compuestos de múltiples dominios. El peso molecular predicho es de 319 kD.
Esta proteína posee diferentes dominios, entre ellos el más caracterizado es el dominio BEACH (Del inglés, beige and Chediak-Higashi). Este dominio, de aproximadamente ~280 aminoácidos, se conserva en varias proteínas agrupadas como familia BDCP (Del inglés, BEACH domain containing proteins) , en las cuales se localiza generalmente hacia el extremo C-terminal (,. La función de este dominio es desconocida y su secuencia no presenta homología con ninguna proteína en la base de datos del proteoma humano (,. Además del dominio BEACH, las BDCP comparten los dominios ConA-like (del inglés, concanavalin A-like), PH (del inglés, Pleckstrin homology) y WD40 (repeticiones de triptófano y ácido aspártico. Por su parte, el dominio DUF1088 (del inglés, domain of unknown function 1088) es compartido solo porLRBA y su parálogo Neurobeachin, lo cual podría indicar una función específica de estas dos proteínas no compartida por otros miembros de las BDCP.Además de estos dominios, LRBA parece contener un dominio VHS (del inglés, VPS (vacuolar protein sorting)-27, Hrs (hepatocyte growth factor-regulated tyrosine kinase sustrate) STAM (signal transducing adaptor molecule) (. Las posibles funciones de estos dominios se explican en la Tabla 1.
Tabla 1
Características generales de los dominios de la proteín LRBA.
Dominio
Características
Referencia
BEACH
Está presente en proteínas implicadas en el tráfico de vesículas, dinámica de membranas y señalización de receptores.
12,13
PH
Interactúa con fosfatidil-inositol dentro de membranas biológicas, proteínas G hetero-triméricas y proteína quinasa C. Esto permite el direccionamiento apropiado de proteínas a diferentes compartimentos celulares o la activación de vías de transducción de señales.
54
WD40
Implicado en transducción de señales, control del ciclo celular y la apoptosis. Sitio para la interacción transitoria proteína-proteína o para el ensamblaje de complejos proteicos.
55
ConA-like
Participa en el tráfico y distribución de proteínas por vías secretoras.
56
DUF1088
La función de este dominio es desconocida. Sin embargo, una secuencia de penta-arginina localizada en el dominio DUF1088 de Neurobeachin fue identificada como una señal potencial de localización nuclear.
57
VHS
Encontrado en la porción N terminal de proteínas asociadas con endocitosis y/o tráfico vesicular. Posiblemente funciona como un dominio adaptador que ayuda a localizar las proteínas en la membrana celular o en membranas de la maquinaria endocítica.
13
Con respecto a la expresión específica de tejido, se han observado transcriptos de esta proteína principalmente en células de médula ósea, nódulo linfático, bazo, hígado fetal, placenta, riñón y páncreas por medio de RT-PCR (del inglés, Reverse transcription polymerase chain reaction) y qPCR (del inglés, quantitative polymerase chain reaction) . De manera interesante, la expresión de esta proteína no se limita a tejidos del sistema inmune, e incluso su expresión se ve considerablemente aumentada en tejidos provenientes de varios tipos de cáncer . Estos hallazgos sugieren que la función de LRBA está más relacionada con mecanismos celulares básicos de crecimiento, desarrollo y supervivencia. A nivel subcelular, utilizando una sonda dirigida contra el dominio BEACH de LRBA, se observó esta proteína en el citosol, aparato de Golgi y algunos lisosomas en la línea celular de macrófagos murinos RAW264.7 estimulados con LPS . Además, con la utilización del microscopio electrónico, se observó que LRBA se localizó en el retículo endoplásmico, la membrana plasmática y las vesículas de endocitosis asociadas a clatrina en estas mismas células .
Función del LRBA
LRBA participa en el tráfico vesicular y reciclaje de receptores.
CTLA-4 (Del inglés Cytotoxic T-Lymphocyte Antigen 4) es un receptor proteico situado en la membrana celular de los linfocitos T activados. Su función es regular la homeostasis y la tolerancia inmunológica periférica inhibiendo la activación de los linfocitos T, por competición con la molécula coestimuladora CD28, mediante la unión a los ligandos CD80 y CD86, los cuales se expresan en la superficie de las células presentadoras de antígeno . Mientras que CD28 reside principalmente en la superficie celular, CTLA-4 se localiza primero en los compartimentos intracelulares como el aparato de Golgi, los endosomas, los gránulos secretores y las vesículas lisosomales. La estimulación del TCR (del inglés, T cell receptor) promueve el tráfico de CTLA-4 desde los compartimentos vesiculares hacia la membrana celular, sin embargo, en la membrana, este receptor es continuamente endocitado dentro de las vesículas cubiertas de clatrina. Una vez endocitadas, algunas moléculas de CTLA-4 son recicladas a la membrana celular, mientras que otras son rápidamente degradadas en los compartimentos lisosomales ,. CTLA-4 contiene una pequeña cola citoplasmática con dos motivos de tirosina en la posición Y201VKM y Y218FIP. Diversas proteínas intracelulares se unen al motivo Y201VKM, incluyendo AP-1 y AP-2 (del inglés clathrin-associated adaptor). AP-2 media la internalización de CTLA-4 desde la superficie celular a los endosomas y los compartimentos lisosomales, mientras que AP-1 regula en el tráfico de CTLA-4 desde el aparato de Golgi a los compartimentos endosomales y lisosomas para su degradación . En un estudio reciente, se demostró que la proteína LRBA es necesaria para el tráfico vesicular de CTLA-4 hacia la membrana plasmática . Cuando CTLA-4 es requerida en la membrana, LRBA regula el reciclaje de CTLA-4 desde los endosomas a la membrana celular ayudando a mantener los niveles intracelulares de CTLA-4 para su inmediata movilización a la membrana. De esta manera, una deficiencia deLRBA favorece una rápida degradación de CTLA-4 en los compartimentos lisosomales, con su consecuente disminución tanto intracelular como extracelularmente . Este trabajo también demostró que LRBA interactúa por medio del dominio ConA-like y el dominio PH-BEACH con la cola citoplasmática de CTLA-4, específicamente con el motivo Y201VKM. Finalmente, el silenciamiento de AP-1, pero no AP-2 puede rescatar parcialmente la pérdida CTLA-4 en las células deficientes de LRBA. Estos resultados sugieren que LRBA bloquea el tráfico de CTLA-4 a los lisosomas, compitiendo con AP-1por la unión a este motivo . Hallazgos recientes indicaron que los linfocitos CD4+ Foxp3+ provenientes de células del bazo de ratones deficientes para LRBA también exhiben una disminución intracelular de CTLA-4 .Otro estudio que ilustró el papel de LRBA en el tráfico vesicular fue realizado con el receptor del factor de crecimiento epidermal (EGFR, del inglés, epidermal growth factor receptor). Mutantes dominantes negativas para LRBA disminuyeron la expresión y fosforilación de EGFR . El EGFR es un receptor tirosina kinasa el cual se expresa en una gran variedad de tejidos, interactuando no sólo con el EGF sino también con TGF-( (Del inglés, Transforming growth factor-(), y otros ligandos. Esto induce la dimerización y trans-auto-fosforilación del receptor, reclutando proteínas que activan las vías de señalización necesarias para la proliferación, la diferenciación, el crecimiento, la migración e la inhibición de la apoptosis . En los linfocitos, al igual que CTLA-4, su expresión en la superficie celular es regulada por la endocitosis mediada por clatrina, lo cual conduce ya sea a su degradación por vía lisosomal o a su reciclaje a la superficie celular ,. Defectos en el tráfico vesicular de este receptor resultan en una localización aberrante, lo cual potencia la señalización permitiendo el desarrollo de cáncer . Aunque no se conoce si LRBA y EGFR interactúan físicamente, se ha comprobado que AP-2 facilita la endocitosis y el tráfico de EGFRpor la vía endocítica .Finalmente, en pacientes deficientes de LRBA se demostró una disminución en la apoptosis mediada por el receptor de muerte Fas, cuando se comparó con los individuos sanos . El receptor Fas promueve la apoptosis por la vía extrínseca, después de la unión al ligando de Fas (FasL). Posterior a la unión Fas/FasL, se da un proceso de internalización del receptor, similar a lo que ocurre con EGFR, el cual es crucial para desencadenar la apoptosis . Hasta la fecha, se desconoce si existen alteraciones en la cantidad de receptores Fas en la membrana celular en pacientes con deficiencia en LRBA, pero el incremento de FasL en suero en dichos pacientes podría sugerir que posiblemente la deficiencia de LRBA tenga un efecto en el receptor Fas similar al de CTLA-4, regulando su tráfico ya sea hacia la membrana celular o lisosomas .Estas evidencias nos llevan también a preguntarnos si LRBA estaría implicado en el tráfico vesicular de otros receptores en linfocitos?. En ratones deficientes para LRBA se ha reportaron defectos en la fosforilación de ERK1/2 (del inglés, extracellular signal-regulated kinases) y AKT en células NK (del inglés, natural killer) estimuladas con anticuerpos anti-NKG2D o anti-NKp46, con una disminución significativa en la producción de IFN-gamma después de estos estímulos . Aunque en este estudio no se determinaron los niveles de expresión de estos receptores en los ratones deficientes de LRBA, existen algunas evidencias que indican que la exposición a sus ligandos específicos, induce la degradación de NKG2D y DAP10, la molécula adaptadora intracelular de este receptor en los lisosomas . Esta regulación parece ser mediada por clatrina . No se conoce si LRBA está involucrado en el tráfico intracelular de estos receptores en células NK. De la misma manera, considerando que la deficiencia deLRBA conlleva a defectos en las respuestas de anticuerpos, es importante considerar también, si esta molécula regula la expresión y función de otros receptores cuya expresión es modulada por compartimentos vesiculares, procesos determinantes para la activación del linfocito B .A pesar de los estudios sobre la modulación de algunos receptores celulares mediada porLRBA, es poco lo que se conoce sobre las vías de tráfico intracelular utilizadas por esta molécula para realizar dicha función. Se ha descrito que dicho transporte se realiza mediante el reclutamiento de proteínas en vesículas recubiertas por clatrina, en el cual el receptor es removido a endosomas tempranos y posteriormente degradado por enzimas lisosomales o reciclado a la superficie celular . AP-1 se considera necesario para este transporte. La localización de AP-1 en el aparato de Golgi y en endosomas, depende de su unión directa a Arf (del inglés: ADP-ribosylation factor)-1 y específicamente en endosomas de reciclaje, a Arf-6, entre otros complejos proteicos . Como ya se mencionó, LRBA inhibe la degradación de CTLA-4 en lisosomas por competición con AP-1, demostrando ser necesario para la movilización a estos compartimientos . Sin embargo, la relación de LRBA con toda la vía endosomal no es clara. El reciclaje de receptores depende además de los compartimientos vesiculares, de proteínas involucradas incluidas las Arf, de enzimas como la fosfolipasa D y de las proteínas Rab. De manera interesante, un estudio realizado en Drosophila, sugiere una posible interacción funcional entre bchs (del inglés blue cheese), un miembro de la familia BEACH, y Rab11 . Estos hallazgos sugieren que, así como Rab11, Bchs podría ser un regulador del tráfico de las vesículas.Por lo tanto, son necesarios estudios que cuantifiquen la expresión de los receptores mencionados en células deficientes de LRBA (silenciadas o provenientes de pacientes). También sería útil el uso de técnicas avanzadas de microscopía, con lo cual se pudiera demostrar la localización de LRBA en otras organelas involucradas en este tipo de tráfico. Además, estudios de co-inmunoprecipitación entre LRBA y las proteínas de tráfico vesicular, el uso de drogas que bloqueen este tráfico o la implementación de dominantes negativos de ARFs, fosfolipasa D o las Rab, podrían ampliar nuestro conocimiento sobre la interacción de LRBA con otras moléculas de tráfico vesicular y así determinar su relación con la expresión en membrana de receptores como EGFR, Fas o los receptores activadores de las células NK, linfocitos B u otros en células inmunes.
LRBA es una molécula implicada en autofagia
La autofagia es un mecanismo de degradación lisosomal por el cual la célula destruye organelas dañadas y microorganismos y ayuda a reciclar macromoléculas. En este proceso se forma una doble membrana de aislamiento o fagóforo cerca al blanco, que luego se elonga, rodeándolo, para posteriormente madurar con la asimilación de una carga citosólica formando el autofagosoma. Para que la maduración sea efectiva, el autofagosoma se debe fusionar con los endosomas tempranos o tardíos formando una estructura llamada anfisoma ,. Por último, el autofagosoma maduro se fusiona con el lisosoma para permitir la degradación de su contenido por las proteasas lisosómicas y enzimas hidrolíticas .Cuando estudiamos los genes homólogos de LRBA, encontramos que varios de ellos están implicados en la autofagia. WDFY3 (del inglés - WD and FYVE zinc finger domain containing protein 3), codifica una proteína que colocaliza con marcadores de autofagosomas ,. Además, su dominio PH-BEACH interacciona con la proteína p62 . P62 es una proteína localizada en los sitios de formación de los autofagosomas y se asocia tanto con LC3 (Del inglés, microtubule-associated protein 1A/1B-light chain 3) como con proteínas ubiquitinadas ,,. LC3 es una proteína citosólica que cuando se conjuga con una fosfatidiletanolamina es reclutada a la membrana del autofagosoma favoreciendo el flujo autofágico . Por otro lado, defectos en el gen ortólogo de LYST, mauve (mv) en Drosophila, afecta la función de autofagosomas .En células B inmortalizadas provenientes de pacientes con deficiencia deLRBA se observó una reducción significativa en el proceso de autofagia en respuesta a la inanición, además hubo un incremento en el área del aparato de Golgi, una acumulación de los autofagosomas y la presencia de centriolos, al compararse con las células provenientes de un individuo sano . Estos resultados sugieren que el flujo de la autofagia está deteriorado en la deficiencia deLRBA, un hallazgo que fue demostrado por una fusión deficiente del autofagosoma a los lisosomas en linfocitos B inmortalizados de pacientes deficientes de LRBA, sometidos a inanición . Sin embargo, ¿cuál son las posibles funciones de LRBA en los procesos de autofagia? Considerando que tanto el tráfico de receptores de superficie celular como la autofagia necesitan de vesículas endocíticas, y que LRBA posiblemente se encuentra ubicado en estas vesículas, una posible hipótesis es que LRBA facilite la fusión entre el autofagosoma y el endosoma tardío y, por consiguiente, la formación del anfisoma. Uno de los marcadores de los endosomas tardíos es Rab7 y se ha demostrado en células CHO transfectadas con la mutante dominante negativa de Rab7, T22N, que esta molécula se requiere para la formación de los anfisomas . Otra hipótesis que se podría considerar es que, de la misma manera que con el tráfico vesicular de CTLA-4, también en el contexto de autofagia en linfocitos, LRBA compita con proteínas adaptadoras de clatrina, regulando este proceso. Esto ya que se ha observado, que moléculas como clatrina y sus proteínas adaptadoras son también importantes para el flujo autofágico ,. Por otra parte, herramientas in silico han predicho que LRBA interactúa con LC3 .En un intento por asociar los defectos en la autofagia con las características clínicas encontradas en los individuos con deficiencia deLRBA, es importante tener en cuenta que una de las manifestaciones clínicas más comunes entre estos individuos es la gastropatía, en muchos casos expresada como Enfermedad Inflamatoria Intestinal (EII) o enfermedad similar a EII, una condición que se caracteriza por una inflamación recurrente destructiva en el tracto intestinal -. Un incremento en la producción de IL-1β en la mucosa intersticial se ha involucrado con la inflamación descontrolada en esta enfermedad . Los macrófagos derivados de ratones deficientes para ATG16L1 (del inglés, autophagy-related 16-like 1), los cuales presentan un defecto en la autofagia, muestran una elevada producción de IL-1β después de la estimulación con LPS . De la misma manera, el polimorfismo rs2241880 en ATG16L1 incrementó la producción de IL-1β en células mononucleares de sangre periférica aisladas de pacientes con EII . La autofagia puede regular la producción de IL-1β mediante dos vías: en ausencia de autofagia, las mitocondrias defectuosas se acumulan generando un incremento de ROS (del inglés, reactive oxygen species) y liberando ADN mitocondrial al citoplasma, eventos que activan el inflamosoma, aumentando la producción de IL-1β ,. Por otra parte, la degradación de la pro-IL-1β mediada por los procesos de autofagia limita el sustrato disponible para el inflamasoma, regulando de esta manera la activación de la IL-1β ,. Por lo tanto, las alteraciones en la autofagia limitarían este mecanismo, aumentando los niveles de IL-1β e induciendo inflamación. No se conoce si las manifestaciones intestinales en los pacientes con deficiencia en LRBA están mediadas por una excesiva actividad del inflamosoma y la exagerada producción de IL-1β.Se requieren estudios de microscopia con células deficientes de LRBA que estudien la distribución intracelular de moléculas como Rab7 y LC3 tras el flujo autofágico. Sería interesante también investigar si LRBA interactúa físicamente con alguna de las moléculas Rab involucradas en los diferentes tipos de autofagia, por medio de ensayos de co-inmunoprecipitación. El papel de LRBA en la actividad del inflamosoma pudiera abordarse mediante la medición de la producción de IL-1β en células fagocíticas o del epitelio intestinal deficientes de LRBA o determinando la actividad del auto-inflamosoma activo por medio de redistribución de ASC (del inglés, apoptosis-associated speck-like protein containing a caspase-recruitment domain), la cual es una proteína que recluta las caspasas necesarias en para la activación del inflamosoma.
LRBA participa en la apoptosis
En linfocitos B inmortalizados sometidos a inanición provenientes de pacientes deficientes de LRBA, se observó un incremento significativo de la apoptosis . Adicionalmente, en células HeLa silenciadas para LRBA expuestas a luz ultravioleta o estaurosporina, se observó un mayor clivaje de PARP (por sus siglas en inglés, Poly (ADP-ribose) polymerase) y de la caspasa 3, eventos necesarios para iniciar la cascada de señalización que finalmente lleva a la apoptosis .La apoptosis es un tipo de muerte celular programada por la misma célula con el fin de controlar su desarrollo y crecimiento. Por mucho tiempo se ha considerado a las caspasas como las proteasas involucradas en la ejecución del programa de apoptosis, y hoy en día se conoce que la desestabilización parcial de la membrana lisosomal, con la consecuente liberación de enzimas hidrolíticas, puede iniciar y ejecutar el programa de apoptosis, activando las caspasas ,. En los centros germinales provenientes de amígdalas se observó que la desestabilización lisosomal en linfocitos B contribuye a la apoptosis . La inducción del daño lisosomal en estos linfocitos B resultó en el clivaje de la caspasa 8 y también del ADN, debido a la actividad incrementada de la catepsina B en el citoplasma. De manera interesante, se ha observado que p53 induce desestabilización lisosomal y el promotor de LRBA es regulado negativamente porp53 . P53 es un gen supresor de tumores que codifica un factor de transcripción nuclear cuya expresión se incrementa en respuesta al daño, deteniendo el ciclo celular y facilitando la reparación del ADN o induciendo apoptosis . Se podría plantear la hipótesis que en ausencia de LRBA, p53 induce desestabilización lisosomal y como consecuencia la apoptosis en linfocitos. Sin embargo, hasta el momento no se conoce el mecanismo por el cual p53 induce la desestabilización lisosomal ni como LRBA protege las células de la apoptosis.No obstante, parece existir una conexión entre los mecanismos de autofagia y la apoptosis. Aunque la diafonía entre los procesos de autofagia y la apoptosis es compleja también es crítica para el destino celular. Bajo ciertas condiciones celulares, la autofagia puede promover la supervivencia celular y evitar la apoptosis . Por ejemplo, el aumento de la autofagia en células privadas de nutrientes o factores de crecimiento permite la supervivencia celular al inhibir la apoptosis. Un mecanismo sugerido por el cual la autofagia inhibe la apoptosis, es el secuestro de las mitocondrias dañadas por el autofagosoma, evitando así que el citocromo c mitocondrial liberado sea capaz de formar un apoptosoma funcional en el citoplasma . Sin embargo, en otras condiciones, la autofagia puede culminar en la muerte celular, de manera dependiente o independiente de la apoptosis . Adicionalmente, son varias las proteínas que comparten un papel dual tanto en la apoptosis como en la autofagia . Estas proteínas autofágicas regulan positivamente o negativamente la apoptosis mitocondrial directa o indirectamente a través del clivaje de proteasas . En el contexto de las células deficientes de LRBA, se ha demostrado una autofagia defectuosa con un aumento en la apoptosis. No se conoce si una alteración en la depuración de las mitocondrias dañadas o un exagerado clivaje de las proteasas son los responsables de este fenotipo celular.Por lo tanto, es necesario evaluar la cantidad y la integridad de los lisosomas en las células inmunes deficientes de LRBA. Además, se pudiera estimar la cinética de desestabilización lisosomal en relación con la cinética de otros parámetros apoptóticos como, inestabilidad mitocondrial, activación de caspasa-3 y escisión de ADN.
Conclusión
En la última década se ha generado una gran cantidad de nueva información sobre la asociación de LRBA con el sistema inmune, su localización celular y su función. Esto ha impulsado nuestra comprensión de su papel en los procesos como el tráfico vesicular, la autofagia y la apoptosis. Sin embargo, muchas preguntas quedan por responder. Primero, ¿Está LRBA localizado en el sistema de endomembranas? ¿Forma LRBA complejos proteicos con otras proteínas como las Rab o las Arf? ¿modula LRBA el tráfico de receptores como Fas, NKG2D o NKp46? Hay evidencia de que LRBA evita la degradación de CTLA-4por competición de AP-1 en linfocitos T reguladores humanos, una proteína que interactúa con Arf1 y Arf6. Además, el gen ortólogo Bchs en Drosophila modela el tráfico dependiente de Rab11. Esto plantea la posibilidad de que LRBA module varios receptores inmunes mediante el tráfico de vesículas y, por lo tanto, sea determinante en el desarrollo normal de la respuesta inmune.En segundo lugar, aunque se ha determinado que los defectos en LRBA conlleva a una autofagia deficiente, ¿cuáles son las funciones de esta proteína en estos procesos?, ¿Cuál es su localización en autofagosoma, anfisomas, autofagolisomas?, ¿interactua LRBA físicamente con moléculas implicadas en la autofagia como LC3, ATG o Rab7?, Al estudiar el tráfico vesicular y la autofagia encontramos una conexión medida porRab7, el cual se necesita para la fusión entre los endosomas tardíos y el autofagolisosoma, por lo que es posible pensar que LRBA puede ser requerido para la fusión entre estas dos organelas.En tercer lugar, ¿puede la deficiencia de LRBA afectar la estabilidad lisosomal y de este modo desencadenar la apoptosis? Se sabe de la interacción de LRBA con estas vesículas, sin embargo, los mecanismos que subyacen a su función en este contexto, aún no se han dilucidado por completo.Finalmente, la asociación entre el tráfico endosomal, la autofagia, la apoptosis y la proteína LRBA aún no se han abordado. Sin embargo, con base a lo expuesto en esta revisión nosotros proponemos un modelo de LRBA en el tráfico de CTLA-4 (Fig. 2). Una comprensión completa de la función LRBA también requiere una disección detallada de su estructura. Es necesario caracterizar la función de sus dominios en la interacción con otras proteínas y en general, en la homeostasis celular.
Figura 2
LRBA en la regulación del tráfico vesicular.CTLA-4 es un receptor situado en la membrana de los linfocitos T activados. Este receptor es internalizado en vesículas recubiertas de clatrina mediante su interacción con AP2. LRBA regula el reciclaje de CTLA-4 desde los endosomas a la membrana celular, impidiendo su degradación en los compartimentos lisosomales. Los procesos de autofagia también necesitan de las vesículas endocíticas. LRBA se encuentra ubicado en estas vesículas y podría interaccionar con moléculas aún no identificadas para facilitar la fusión entre el autofagosoma y el endosoma tardío.
Se espera que las nuevas tecnologías de microscopia avanzada, de edición genética como CRISPR/Cas9 o la genómica, y los nuevos conceptos como transcriptoma, proteoma, metaboloma, epigenoma, ayuden a resolver muchas de estas preguntas para delucidar el papel de esta proteína y plantear estrategias para su regulación.
Authors: Kirsten van Nierop; Femke J M Muller; Jan Stap; Cornelis J F Van Noorden; Marco van Eijk; Cornelis de Groot Journal: J Histochem Cytochem Date: 2006-09-06 Impact factor: 2.479
Authors: Daniel J Klionsky; Amal Kamal Abdel-Aziz; Sara Abdelfatah; Mahmoud Abdellatif; Asghar Abdoli; Steffen Abel; Hagai Abeliovich; Marie H Abildgaard; Yakubu Princely Abudu; Abraham Acevedo-Arozena; Iannis E Adamopoulos; Khosrow Adeli; Timon E Adolph; Annagrazia Adornetto; Elma Aflaki; Galila Agam; Anupam Agarwal; Bharat B Aggarwal; Maria Agnello; Patrizia Agostinis; Javed N Agrewala; Alexander Agrotis; Patricia V Aguilar; S Tariq Ahmad; Zubair M Ahmed; Ulises Ahumada-Castro; Sonja Aits; Shu Aizawa; Yunus Akkoc; Tonia Akoumianaki; Hafize Aysin Akpinar; Ahmed M Al-Abd; Lina Al-Akra; Abeer Al-Gharaibeh; Moulay A Alaoui-Jamali; Simon Alberti; Elísabet Alcocer-Gómez; Cristiano Alessandri; Muhammad Ali; M Abdul Alim Al-Bari; Saeb Aliwaini; Javad Alizadeh; Eugènia Almacellas; Alexandru Almasan; Alicia Alonso; Guillermo D Alonso; Nihal Altan-Bonnet; Dario C Altieri; Élida M C Álvarez; Sara Alves; Cristine Alves da Costa; Mazen M Alzaharna; Marialaura Amadio; Consuelo Amantini; Cristina Amaral; 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Audrey Esclatine; Mafalda Escobar-Henriques; Eeva-Liisa Eskelinen; Lucile Espert; Makandjou-Ola Eusebio; Gemma Fabrias; Cinzia Fabrizi; Antonio Facchiano; Francesco Facchiano; Bengt Fadeel; Claudio Fader; Alex C Faesen; W Douglas Fairlie; Alberto Falcó; Bjorn H Falkenburger; Daping Fan; Jie Fan; Yanbo Fan; Evandro F Fang; Yanshan Fang; Yognqi Fang; Manolis Fanto; Tamar Farfel-Becker; Mathias Faure; Gholamreza Fazeli; Anthony O Fedele; Arthur M Feldman; Du Feng; Jiachun Feng; Lifeng Feng; Yibin Feng; Yuchen Feng; Wei Feng; Thais Fenz Araujo; Thomas A Ferguson; Álvaro F Fernández; Jose C Fernandez-Checa; Sonia Fernández-Veledo; Alisdair R Fernie; Anthony W Ferrante; Alessandra Ferraresi; Merari F Ferrari; Julio C B Ferreira; Susan Ferro-Novick; Antonio Figueras; Riccardo Filadi; Nicoletta Filigheddu; Eduardo Filippi-Chiela; Giuseppe Filomeni; Gian Maria Fimia; Vittorio Fineschi; Francesca Finetti; Steven Finkbeiner; Edward A Fisher; Paul B Fisher; Flavio Flamigni; Steven J Fliesler; Trude H Flo; Ida Florance; Oliver Florey; Tullio Florio; Erika Fodor; Carlo Follo; Edward A Fon; Antonella Forlino; Francesco Fornai; Paola Fortini; Anna Fracassi; Alessandro Fraldi; Brunella Franco; Rodrigo Franco; Flavia Franconi; Lisa B Frankel; Scott L Friedman; Leopold F Fröhlich; Gema Frühbeck; Jose M Fuentes; Yukio Fujiki; Naonobu Fujita; Yuuki Fujiwara; Mitsunori Fukuda; Simone Fulda; Luc Furic; Norihiko Furuya; Carmela Fusco; Michaela U Gack; Lidia Gaffke; Sehamuddin Galadari; Alessia Galasso; Maria F Galindo; Sachith Gallolu Kankanamalage; Lorenzo Galluzzi; Vincent Galy; Noor Gammoh; Boyi Gan; Ian G Ganley; Feng Gao; Hui Gao; Minghui Gao; Ping Gao; Shou-Jiang Gao; Wentao Gao; Xiaobo Gao; Ana Garcera; Maria Noé Garcia; Verónica E Garcia; Francisco García-Del Portillo; Vega Garcia-Escudero; Aracely Garcia-Garcia; Marina Garcia-Macia; Diana García-Moreno; Carmen Garcia-Ruiz; Patricia García-Sanz; Abhishek D Garg; Ricardo Gargini; Tina Garofalo; Robert F Garry; Nils C Gassen; Damian Gatica; Liang Ge; Wanzhong Ge; Ruth Geiss-Friedlander; Cecilia Gelfi; Pascal Genschik; Ian E Gentle; Valeria Gerbino; Christoph Gerhardt; Kyla Germain; Marc Germain; David A Gewirtz; Elham Ghasemipour Afshar; Saeid Ghavami; Alessandra Ghigo; Manosij Ghosh; Georgios Giamas; Claudia Giampietri; Alexandra Giatromanolaki; Gary E Gibson; Spencer B Gibson; Vanessa Ginet; Edward Giniger; Carlotta Giorgi; Henrique Girao; Stephen E Girardin; Mridhula Giridharan; Sandy Giuliano; Cecilia Giulivi; Sylvie Giuriato; Julien Giustiniani; Alexander Gluschko; Veit Goder; Alexander Goginashvili; Jakub Golab; David C Goldstone; Anna Golebiewska; Luciana R Gomes; Rodrigo Gomez; Rubén Gómez-Sánchez; Maria Catalina Gomez-Puerto; Raquel Gomez-Sintes; Qingqiu Gong; Felix M Goni; Javier González-Gallego; Tomas Gonzalez-Hernandez; Rosa A Gonzalez-Polo; Jose A Gonzalez-Reyes; Patricia González-Rodríguez; Ing Swie Goping; Marina S Gorbatyuk; Nikolai V Gorbunov; Kıvanç Görgülü; Roxana M Gorojod; Sharon M Gorski; Sandro Goruppi; Cecilia Gotor; Roberta A Gottlieb; Illana Gozes; Devrim Gozuacik; Martin Graef; Markus H Gräler; Veronica Granatiero; Daniel Grasso; Joshua P Gray; Douglas R Green; Alexander Greenhough; Stephen L Gregory; Edward F Griffin; Mark W Grinstaff; Frederic Gros; Charles Grose; Angelina S Gross; Florian Gruber; Paolo Grumati; Tilman Grune; Xueyan Gu; Jun-Lin Guan; Carlos M Guardia; Kishore Guda; Flora Guerra; Consuelo Guerri; Prasun Guha; Carlos Guillén; Shashi Gujar; Anna Gukovskaya; Ilya Gukovsky; Jan Gunst; Andreas Günther; Anyonya R Guntur; Chuanyong Guo; Chun Guo; Hongqing Guo; Lian-Wang Guo; Ming Guo; Pawan Gupta; Shashi Kumar Gupta; Swapnil Gupta; Veer Bala Gupta; Vivek Gupta; Asa B Gustafsson; David D Gutterman; Ranjitha H B; Annakaisa Haapasalo; James E Haber; Aleksandra Hać; Shinji Hadano; Anders J Hafrén; Mansour Haidar; Belinda S Hall; Gunnel Halldén; Anne Hamacher-Brady; Andrea Hamann; Maho Hamasaki; Weidong Han; Malene Hansen; Phyllis I Hanson; Zijian Hao; Masaru Harada; Ljubica Harhaji-Trajkovic; Nirmala Hariharan; Nigil Haroon; James Harris; Takafumi Hasegawa; Noor Hasima Nagoor; Jeffrey A Haspel; Volker Haucke; Wayne D Hawkins; Bruce A Hay; Cole M Haynes; Soren B Hayrabedyan; Thomas S Hays; Congcong He; Qin He; Rong-Rong He; You-Wen He; Yu-Ying He; Yasser Heakal; Alexander M Heberle; J Fielding Hejtmancik; Gudmundur Vignir Helgason; Vanessa Henkel; Marc Herb; Alexander Hergovich; Anna Herman-Antosiewicz; Agustín Hernández; Carlos Hernandez; Sergio Hernandez-Diaz; Virginia Hernandez-Gea; Amaury Herpin; Judit Herreros; Javier H Hervás; Daniel Hesselson; Claudio Hetz; Volker T Heussler; Yujiro Higuchi; Sabine Hilfiker; Joseph A Hill; William S Hlavacek; Emmanuel A Ho; Idy H T Ho; Philip Wing-Lok Ho; Shu-Leong Ho; Wan Yun Ho; G Aaron Hobbs; Mark Hochstrasser; Peter H M Hoet; Daniel Hofius; Paul Hofman; Annika Höhn; Carina I Holmberg; Jose R Hombrebueno; Chang-Won Hong Yi-Ren Hong; Lora V Hooper; Thorsten Hoppe; Rastislav Horos; Yujin Hoshida; I-Lun Hsin; Hsin-Yun Hsu; Bing Hu; Dong Hu; Li-Fang Hu; Ming Chang Hu; Ronggui Hu; Wei Hu; Yu-Chen Hu; Zhuo-Wei Hu; Fang Hua; Jinlian Hua; Yingqi Hua; Chongmin Huan; Canhua Huang; Chuanshu Huang; Chuanxin Huang; Chunling Huang; Haishan Huang; Kun Huang; Michael L H Huang; Rui Huang; Shan Huang; Tianzhi Huang; Xing Huang; Yuxiang Jack Huang; Tobias B Huber; Virginie Hubert; Christian A Hubner; Stephanie M Hughes; William E Hughes; Magali Humbert; Gerhard Hummer; James H Hurley; Sabah Hussain; Salik Hussain; Patrick J Hussey; Martina Hutabarat; Hui-Yun Hwang; Seungmin Hwang; Antonio Ieni; Fumiyo Ikeda; Yusuke Imagawa; Yuzuru Imai; Carol Imbriano; Masaya Imoto; Denise M Inman; Ken Inoki; Juan Iovanna; Renato V Iozzo; Giuseppe Ippolito; Javier E Irazoqui; Pablo Iribarren; Mohd Ishaq; Makoto Ishikawa; Nestor Ishimwe; Ciro Isidoro; Nahed Ismail; Shohreh Issazadeh-Navikas; Eisuke Itakura; Daisuke Ito; Davor Ivankovic; Saška Ivanova; Anand Krishnan V Iyer; José M Izquierdo; Masanori Izumi; Marja Jäättelä; Majid Sakhi Jabir; William T Jackson; Nadia Jacobo-Herrera; Anne-Claire Jacomin; Elise Jacquin; Pooja Jadiya; Hartmut Jaeschke; Chinnaswamy Jagannath; Arjen J Jakobi; Johan Jakobsson; Bassam Janji; Pidder Jansen-Dürr; Patric J Jansson; Jonathan Jantsch; Sławomir Januszewski; Alagie Jassey; Steve Jean; Hélène Jeltsch-David; Pavla Jendelova; Andreas Jenny; Thomas E Jensen; Niels Jessen; Jenna L Jewell; Jing Ji; Lijun Jia; Rui Jia; Liwen Jiang; Qing Jiang; Richeng Jiang; Teng Jiang; Xuejun Jiang; Yu Jiang; Maria Jimenez-Sanchez; Eun-Jung Jin; Fengyan Jin; Hongchuan Jin; Li Jin; Luqi Jin; Meiyan Jin; Si Jin; Eun-Kyeong Jo; Carine Joffre; Terje Johansen; Gail V W Johnson; Simon A Johnston; Eija Jokitalo; Mohit Kumar Jolly; Leo A B Joosten; Joaquin Jordan; Bertrand Joseph; Dianwen Ju; Jeong-Sun Ju; Jingfang Ju; Esmeralda Juárez; Delphine Judith; Gábor Juhász; Youngsoo Jun; Chang Hwa Jung; Sung-Chul Jung; Yong Keun Jung; Heinz Jungbluth; Johannes Jungverdorben; Steffen Just; Kai Kaarniranta; Allen Kaasik; Tomohiro Kabuta; Daniel Kaganovich; Alon Kahana; Renate Kain; Shinjo Kajimura; Maria Kalamvoki; Manjula Kalia; Danuta S Kalinowski; Nina Kaludercic; Ioanna Kalvari; Joanna Kaminska; Vitaliy O Kaminskyy; Hiromitsu Kanamori; Keizo Kanasaki; Chanhee Kang; Rui Kang; Sang Sun Kang; Senthilvelrajan Kaniyappan; Tomotake Kanki; Thirumala-Devi Kanneganti; Anumantha G Kanthasamy; Arthi Kanthasamy; Marc Kantorow; Orsolya Kapuy; Michalis V Karamouzis; Md Razaul Karim; Parimal Karmakar; Rajesh G Katare; Masaru Kato; Stefan H E Kaufmann; Anu Kauppinen; Gur P Kaushal; Susmita Kaushik; Kiyoshi Kawasaki; Kemal Kazan; Po-Yuan Ke; Damien J Keating; Ursula Keber; John H Kehrl; Kate E Keller; Christian W Keller; Jongsook Kim Kemper; Candia M Kenific; Oliver Kepp; Stephanie Kermorgant; Andreas Kern; Robin Ketteler; Tom G Keulers; Boris Khalfin; Hany Khalil; Bilon Khambu; Shahid Y Khan; Vinoth Kumar Megraj Khandelwal; Rekha Khandia; Widuri Kho; Noopur V Khobrekar; Sataree Khuansuwan; Mukhran Khundadze; Samuel A Killackey; Dasol Kim; Deok Ryong Kim; Do-Hyung Kim; Dong-Eun Kim; Eun Young Kim; Eun-Kyoung Kim; Hak-Rim Kim; Hee-Sik Kim; Jeong Hun Kim; Jin Kyung Kim; Jin-Hoi Kim; Joungmok Kim; Ju Hwan Kim; Keun Il Kim; Peter K Kim; Seong-Jun Kim; Scot R Kimball; Adi Kimchi; Alec C Kimmelman; Tomonori Kimura; Matthew A King; Kerri J Kinghorn; Conan G Kinsey; Vladimir Kirkin; Lorrie A Kirshenbaum; Sergey L Kiselev; Shuji Kishi; Katsuhiko Kitamoto; Yasushi Kitaoka; Kaio Kitazato; Richard N Kitsis; Josef T Kittler; Ole Kjaerulff; Peter S Klein; Thomas Klopstock; Jochen Klucken; Helene Knævelsrud; Roland L Knorr; Ben C B Ko; Fred Ko; Jiunn-Liang Ko; Hotaka Kobayashi; Satoru Kobayashi; Ina Koch; Jan C Koch; Ulrich Koenig; Donat Kögel; Young Ho Koh; Masato Koike; Sepp D Kohlwein; Nur M Kocaturk; Masaaki Komatsu; Jeannette König; Toru Kono; Benjamin T Kopp; Tamas Korcsmaros; Gözde Korkmaz; Viktor I Korolchuk; Mónica Suárez Korsnes; Ali Koskela; Janaiah Kota; Yaichiro Kotake; Monica L Kotler; Yanjun Kou; Michael I Koukourakis; Evangelos Koustas; Attila L Kovacs; Tibor Kovács; Daisuke Koya; Tomohiro Kozako; Claudine Kraft; Dimitri Krainc; Helmut Krämer; Anna D Krasnodembskaya; Carole Kretz-Remy; Guido Kroemer; Nicholas T Ktistakis; Kazuyuki Kuchitsu; Sabine Kuenen; Lars Kuerschner; Thomas Kukar; Ajay Kumar; Ashok Kumar; Deepak Kumar; Dhiraj Kumar; Sharad Kumar; Shinji Kume; Caroline Kumsta; Chanakya N Kundu; Mondira Kundu; Ajaikumar B Kunnumakkara; Lukasz Kurgan; Tatiana G Kutateladze; Ozlem Kutlu; SeongAe Kwak; Ho Jeong Kwon; Taeg Kyu Kwon; Yong Tae Kwon; Irene Kyrmizi; Albert La Spada; Patrick Labonté; Sylvain Ladoire; Ilaria Laface; Frank Lafont; Diane C Lagace; Vikramjit Lahiri; Zhibing Lai; Angela S Laird; Aparna Lakkaraju; Trond Lamark; Sheng-Hui Lan; Ane Landajuela; Darius J R Lane; Jon D Lane; Charles H Lang; Carsten Lange; Ülo Langel; Rupert Langer; Pierre Lapaquette; Jocelyn Laporte; Nicholas F LaRusso; Isabel Lastres-Becker; Wilson Chun Yu Lau; Gordon W Laurie; Sergio Lavandero; Betty Yuen Kwan Law; Helen Ka-Wai Law; Rob Layfield; Weidong Le; Herve Le Stunff; Alexandre Y Leary; Jean-Jacques Lebrun; Lionel Y W Leck; Jean-Philippe Leduc-Gaudet; Changwook Lee; Chung-Pei Lee; Da-Hye Lee; Edward B Lee; Erinna F Lee; Gyun Min Lee; He-Jin Lee; Heung Kyu Lee; Jae Man Lee; Jason S Lee; Jin-A Lee; Joo-Yong Lee; Jun Hee Lee; Michael Lee; Min Goo Lee; Min Jae Lee; Myung-Shik Lee; Sang Yoon Lee; Seung-Jae Lee; Stella Y Lee; Sung Bae Lee; Won Hee Lee; Ying-Ray Lee; Yong-Ho Lee; Youngil Lee; Christophe Lefebvre; Renaud Legouis; Yu L Lei; Yuchen Lei; Sergey Leikin; Gerd Leitinger; Leticia Lemus; Shuilong Leng; Olivia Lenoir; Guido Lenz; Heinz Josef Lenz; Paola Lenzi; Yolanda León; Andréia M Leopoldino; Christoph Leschczyk; Stina Leskelä; Elisabeth Letellier; Chi-Ting Leung; Po Sing Leung; Jeremy S Leventhal; Beth Levine; Patrick A Lewis; Klaus Ley; Bin Li; Da-Qiang Li; Jianming Li; Jing Li; Jiong Li; Ke Li; Liwu Li; Mei Li; Min Li; Min Li; Ming Li; Mingchuan Li; Pin-Lan Li; Ming-Qing Li; Qing Li; Sheng Li; Tiangang Li; Wei Li; Wenming Li; Xue Li; Yi-Ping Li; Yuan Li; Zhiqiang Li; Zhiyong Li; Zhiyuan Li; Jiqin Lian; Chengyu Liang; Qiangrong Liang; Weicheng Liang; Yongheng Liang; YongTian Liang; Guanghong Liao; Lujian Liao; Mingzhi Liao; Yung-Feng Liao; Mariangela Librizzi; Pearl P Y Lie; Mary A Lilly; Hyunjung J Lim; Thania R R Lima; Federica Limana; Chao Lin; Chih-Wen Lin; Dar-Shong Lin; Fu-Cheng Lin; Jiandie D Lin; Kurt M Lin; Kwang-Huei Lin; Liang-Tzung Lin; Pei-Hui Lin; Qiong Lin; Shaofeng Lin; Su-Ju Lin; Wenyu Lin; Xueying Lin; Yao-Xin Lin; Yee-Shin Lin; Rafael Linden; Paula Lindner; Shuo-Chien Ling; Paul Lingor; Amelia K Linnemann; Yih-Cherng Liou; Marta M Lipinski; Saška Lipovšek; Vitor A Lira; Natalia Lisiak; Paloma B Liton; Chao Liu; Ching-Hsuan Liu; Chun-Feng Liu; Cui Hua Liu; Fang Liu; Hao Liu; Hsiao-Sheng Liu; Hua-Feng Liu; Huifang Liu; Jia Liu; Jing Liu; Julia Liu; Leyuan Liu; Longhua Liu; Meilian Liu; Qin Liu; Wei Liu; Wende Liu; Xiao-Hong Liu; Xiaodong Liu; Xingguo Liu; Xu Liu; Xuedong Liu; Yanfen Liu; Yang Liu; Yang Liu; Yueyang Liu; Yule Liu; J Andrew Livingston; Gerard Lizard; Jose M Lizcano; Senka Ljubojevic-Holzer; Matilde E LLeonart; David Llobet-Navàs; Alicia Llorente; Chih Hung Lo; Damián Lobato-Márquez; Qi Long; Yun Chau Long; Ben Loos; Julia A Loos; Manuela G López; Guillermo López-Doménech; José Antonio López-Guerrero; Ana T López-Jiménez; Óscar López-Pérez; Israel López-Valero; Magdalena J Lorenowicz; Mar Lorente; Peter Lorincz; Laura Lossi; Sophie Lotersztajn; Penny E Lovat; Jonathan F Lovell; Alenka Lovy; Péter Lőw; Guang Lu; Haocheng Lu; Jia-Hong Lu; Jin-Jian Lu; Mengji Lu; Shuyan Lu; Alessandro Luciani; John M Lucocq; Paula Ludovico; Micah A Luftig; Morten Luhr; Diego Luis-Ravelo; Julian J Lum; Liany Luna-Dulcey; Anders H Lund; Viktor K Lund; Jan D Lünemann; Patrick Lüningschrör; Honglin Luo; Rongcan Luo; Shouqing Luo; Zhi Luo; Claudio Luparello; Bernhard Lüscher; Luan Luu; Alex Lyakhovich; Konstantin G Lyamzaev; Alf Håkon Lystad; Lyubomyr Lytvynchuk; Alvin C Ma; Changle Ma; Mengxiao Ma; Ning-Fang Ma; Quan-Hong Ma; Xinliang Ma; Yueyun Ma; Zhenyi Ma; Ormond A MacDougald; Fernando Macian; Gustavo C MacIntosh; Jeffrey P MacKeigan; Kay F Macleod; Sandra Maday; Frank Madeo; Muniswamy Madesh; Tobias Madl; Julio Madrigal-Matute; Akiko Maeda; Yasuhiro Maejima; Marta Magarinos; Poornima Mahavadi; Emiliano Maiani; Kenneth Maiese; Panchanan Maiti; Maria Chiara Maiuri; Barbara Majello; Michael B Major; Elena Makareeva; Fayaz Malik; Karthik Mallilankaraman; Walter Malorni; Alina Maloyan; Najiba Mammadova; Gene Chi Wai Man; Federico Manai; Joseph D Mancias; Eva-Maria Mandelkow; Michael A Mandell; Angelo A Manfredi; Masoud H Manjili; Ravi Manjithaya; Patricio Manque; Bella B Manshian; Raquel Manzano; Claudia Manzoni; Kai Mao; Cinzia Marchese; Sandrine Marchetti; Anna Maria Marconi; Fabrizio Marcucci; Stefania Mardente; Olga A Mareninova; Marta Margeta; Muriel Mari; Sara Marinelli; Oliviero Marinelli; Guillermo Mariño; Sofia Mariotto; Richard S Marshall; Mark R Marten; Sascha Martens; Alexandre P J Martin; Katie R Martin; Sara Martin; Shaun Martin; Adrián Martín-Segura; Miguel A Martín-Acebes; Inmaculada Martin-Burriel; Marcos Martin-Rincon; Paloma Martin-Sanz; José A Martina; Wim Martinet; Aitor Martinez; Ana Martinez; Jennifer Martinez; Moises Martinez Velazquez; Nuria Martinez-Lopez; Marta Martinez-Vicente; Daniel O Martins; Joilson O Martins; Waleska K Martins; Tania Martins-Marques; Emanuele Marzetti; Shashank Masaldan; Celine Masclaux-Daubresse; Douglas G Mashek; Valentina Massa; Lourdes Massieu; Glenn R Masson; Laura Masuelli; Anatoliy I Masyuk; Tetyana V Masyuk; Paola Matarrese; Ander Matheu; Satoaki Matoba; Sachiko Matsuzaki; Pamela Mattar; Alessandro Matte; Domenico Mattoscio; José L Mauriz; Mario Mauthe; Caroline Mauvezin; Emanual Maverakis; Paola Maycotte; Johanna Mayer; Gianluigi Mazzoccoli; Cristina Mazzoni; Joseph R Mazzulli; Nami McCarty; Christine McDonald; Mitchell R McGill; Sharon L McKenna; BethAnn McLaughlin; Fionn McLoughlin; Mark A McNiven; Thomas G McWilliams; Fatima Mechta-Grigoriou; Tania Catarina Medeiros; Diego L Medina; Lynn A Megeney; Klara Megyeri; Maryam Mehrpour; Jawahar L Mehta; Alfred J Meijer; Annemarie H Meijer; Jakob Mejlvang; Alicia Meléndez; Annette Melk; Gonen Memisoglu; Alexandrina F Mendes; Delong Meng; Fei Meng; Tian Meng; Rubem Menna-Barreto; Manoj B Menon; Carol Mercer; Anne E Mercier; Jean-Louis Mergny; Adalberto Merighi; Seth D Merkley; Giuseppe Merla; Volker Meske; Ana Cecilia Mestre; Shree Padma Metur; Christian Meyer; Hemmo Meyer; Wenyi Mi; Jeanne Mialet-Perez; Junying Miao; Lucia Micale; Yasuo Miki; Enrico Milan; Małgorzata Milczarek; Dana L Miller; Samuel I Miller; Silke Miller; Steven W Millward; Ira Milosevic; Elena A Minina; Hamed Mirzaei; Hamid Reza Mirzaei; Mehdi Mirzaei; Amit Mishra; Nandita Mishra; Paras Kumar Mishra; Maja Misirkic Marjanovic; Roberta Misasi; Amit Misra; Gabriella Misso; Claire Mitchell; Geraldine Mitou; Tetsuji Miura; Shigeki Miyamoto; Makoto Miyazaki; Mitsunori Miyazaki; Taiga Miyazaki; Keisuke Miyazawa; Noboru Mizushima; Trine H Mogensen; Baharia Mograbi; Reza Mohammadinejad; Yasir Mohamud; Abhishek Mohanty; Sipra Mohapatra; Torsten Möhlmann; Asif Mohmmed; Anna Moles; Kelle H Moley; Maurizio Molinari; Vincenzo Mollace; Andreas Buch Møller; Bertrand Mollereau; Faustino Mollinedo; Costanza Montagna; Mervyn J Monteiro; Andrea Montella; L Ruth Montes; Barbara Montico; Vinod K Mony; Giacomo Monzio Compagnoni; Michael N Moore; Mohammad A Moosavi; Ana L Mora; Marina Mora; David Morales-Alamo; Rosario Moratalla; Paula I Moreira; Elena Morelli; Sandra Moreno; Daniel Moreno-Blas; Viviana Moresi; Benjamin Morga; Alwena H Morgan; Fabrice Morin; Hideaki Morishita; Orson L Moritz; Mariko Moriyama; Yuji Moriyasu; Manuela Morleo; Eugenia Morselli; Jose F Moruno-Manchon; Jorge Moscat; Serge Mostowy; Elisa Motori; Andrea Felinto Moura; Naima Moustaid-Moussa; Maria Mrakovcic; Gabriel Muciño-Hernández; Anupam Mukherjee; Subhadip Mukhopadhyay; Jean M Mulcahy Levy; Victoriano Mulero; Sylviane Muller; Christian Münch; Ashok Munjal; Pura Munoz-Canoves; Teresa Muñoz-Galdeano; Christian Münz; Tomokazu Murakawa; Claudia Muratori; Brona M Murphy; J Patrick Murphy; Aditya Murthy; Timo T Myöhänen; Indira U Mysorekar; Jennifer Mytych; Seyed Mohammad Nabavi; Massimo Nabissi; Péter Nagy; Jihoon Nah; Aimable Nahimana; Ichiro Nakagawa; Ken Nakamura; Hitoshi Nakatogawa; Shyam S Nandi; Meera Nanjundan; Monica Nanni; Gennaro Napolitano; Roberta Nardacci; Masashi Narita; Melissa Nassif; Ilana Nathan; Manabu Natsumeda; Ryno J Naude; Christin Naumann; Olaia Naveiras; Fatemeh Navid; Steffan T Nawrocki; Taras Y Nazarko; Francesca Nazio; Florentina Negoita; Thomas Neill; Amanda L Neisch; Luca M Neri; Mihai G Netea; Patrick Neubert; Thomas P Neufeld; Dietbert Neumann; Albert Neutzner; Phillip T Newton; Paul A Ney; Ioannis P Nezis; Charlene C W Ng; Tzi Bun Ng; Hang T T Nguyen; Long T Nguyen; Hong-Min Ni; Clíona Ní Cheallaigh; Zhenhong Ni; M Celeste Nicolao; Francesco Nicoli; Manuel Nieto-Diaz; Per Nilsson; Shunbin Ning; Rituraj Niranjan; Hiroshi Nishimune; Mireia Niso-Santano; Ralph A Nixon; Annalisa Nobili; Clevio Nobrega; Takeshi Noda; Uxía Nogueira-Recalde; Trevor M Nolan; Ivan Nombela; Ivana Novak; Beatriz Novoa; Takashi Nozawa; Nobuyuki Nukina; Carmen Nussbaum-Krammer; Jesper Nylandsted; Tracey R O'Donovan; Seónadh M O'Leary; Eyleen J O'Rourke; Mary P O'Sullivan; Timothy E O'Sullivan; Salvatore Oddo; Ina Oehme; Michinaga Ogawa; Eric Ogier-Denis; Margret H Ogmundsdottir; Besim Ogretmen; Goo Taeg Oh; Seon-Hee Oh; Young J Oh; Takashi Ohama; Yohei Ohashi; Masaki Ohmuraya; Vasileios Oikonomou; Rani Ojha; Koji Okamoto; Hitoshi Okazawa; Masahide Oku; Sara Oliván; Jorge M A Oliveira; Michael Ollmann; James A Olzmann; Shakib Omari; M Bishr Omary; Gizem Önal; Martin Ondrej; Sang-Bing Ong; Sang-Ging Ong; Anna Onnis; Juan A Orellana; Sara Orellana-Muñoz; Maria Del Mar Ortega-Villaizan; Xilma R Ortiz-Gonzalez; Elena Ortona; Heinz D Osiewacz; Abdel-Hamid K Osman; Rosario Osta; Marisa S Otegui; Kinya Otsu; Christiane Ott; Luisa Ottobrini; Jing-Hsiung James Ou; Tiago F Outeiro; Inger Oynebraten; Melek Ozturk; Gilles Pagès; Susanta Pahari; Marta Pajares; Utpal B Pajvani; Rituraj Pal; Simona Paladino; Nicolas Pallet; Michela Palmieri; Giuseppe Palmisano; Camilla Palumbo; Francesco Pampaloni; Lifeng Pan; Qingjun Pan; Wenliang Pan; Xin Pan; Ganna Panasyuk; Rahul Pandey; Udai B Pandey; Vrajesh Pandya; Francesco Paneni; Shirley Y Pang; Elisa Panzarini; Daniela L Papademetrio; Elena Papaleo; Daniel Papinski; Diana Papp; Eun Chan Park; Hwan Tae Park; Ji-Man Park; Jong-In Park; Joon Tae Park; Junsoo Park; Sang Chul Park; Sang-Youel Park; Abraham H Parola; Jan B Parys; Adrien Pasquier; Benoit Pasquier; João F Passos; Nunzia Pastore; Hemal H Patel; Daniel Patschan; Sophie Pattingre; Gustavo Pedraza-Alva; Jose Pedraza-Chaverri; Zully Pedrozo; Gang Pei; Jianming Pei; Hadas Peled-Zehavi; Joaquín M Pellegrini; Joffrey Pelletier; Miguel A Peñalva; Di Peng; Ying Peng; Fabio Penna; Maria Pennuto; Francesca Pentimalli; Cláudia Mf Pereira; Gustavo J S Pereira; Lilian C Pereira; Luis Pereira de Almeida; Nirma D Perera; Ángel Pérez-Lara; Ana B Perez-Oliva; María Esther Pérez-Pérez; Palsamy Periyasamy; Andras Perl; Cristiana Perrotta; Ida Perrotta; Richard G Pestell; Morten Petersen; Irina Petrache; Goran Petrovski; Thorsten Pfirrmann; Astrid S Pfister; Jennifer A Philips; Huifeng Pi; Anna Picca; Alicia M Pickrell; Sandy Picot; Giovanna M Pierantoni; Marina Pierdominici; Philippe Pierre; Valérie Pierrefite-Carle; Karolina Pierzynowska; Federico Pietrocola; Miroslawa Pietruczuk; Claudio Pignata; Felipe X Pimentel-Muiños; Mario Pinar; Roberta O Pinheiro; Ronit Pinkas-Kramarski; Paolo Pinton; Karolina Pircs; Sujan Piya; Paola Pizzo; Theo S Plantinga; Harald W Platta; Ainhoa Plaza-Zabala; Markus Plomann; Egor Y Plotnikov; Helene Plun-Favreau; Ryszard Pluta; Roger Pocock; Stefanie Pöggeler; Christian Pohl; Marc Poirot; Angelo Poletti; Marisa Ponpuak; Hana Popelka; Blagovesta Popova; Helena Porta; Soledad Porte Alcon; Eliana Portilla-Fernandez; Martin Post; Malia B Potts; Joanna Poulton; Ted Powers; Veena Prahlad; Tomasz K Prajsnar; Domenico Praticò; Rosaria Prencipe; Muriel Priault; Tassula Proikas-Cezanne; Vasilis J Promponas; Christopher G Proud; Rosa Puertollano; Luigi Puglielli; Thomas Pulinilkunnil; Deepika Puri; Rajat Puri; Julien Puyal; Xiaopeng Qi; Yongmei Qi; Wenbin Qian; Lei Qiang; Yu Qiu; Joe Quadrilatero; Jorge Quarleri; Nina Raben; Hannah Rabinowich; Debora Ragona; Michael J Ragusa; Nader Rahimi; Marveh Rahmati; Valeria Raia; Nuno Raimundo; Namakkal-Soorappan Rajasekaran; Sriganesh Ramachandra Rao; Abdelhaq Rami; Ignacio Ramírez-Pardo; David B Ramsden; Felix Randow; Pundi N Rangarajan; Danilo Ranieri; Hai Rao; Lang Rao; Rekha Rao; Sumit Rathore; J Arjuna Ratnayaka; Edward A Ratovitski; Palaniyandi Ravanan; Gloria Ravegnini; Swapan K Ray; Babak Razani; Vito Rebecca; Fulvio Reggiori; Anne Régnier-Vigouroux; Andreas S Reichert; David Reigada; Jan H Reiling; Theo Rein; Siegfried Reipert; Rokeya Sultana Rekha; Hongmei Ren; Jun Ren; Weichao Ren; Tristan Renault; Giorgia Renga; Karen Reue; Kim Rewitz; Bruna Ribeiro de Andrade Ramos; S Amer Riazuddin; Teresa M Ribeiro-Rodrigues; Jean-Ehrland Ricci; Romeo Ricci; Victoria Riccio; Des R Richardson; Yasuko Rikihisa; Makarand V Risbud; Ruth M Risueño; Konstantinos Ritis; Salvatore Rizza; Rosario Rizzuto; Helen C Roberts; Luke D Roberts; Katherine J Robinson; Maria Carmela Roccheri; Stephane Rocchi; George G Rodney; Tiago Rodrigues; Vagner Ramon Rodrigues Silva; Amaia Rodriguez; Ruth Rodriguez-Barrueco; Nieves Rodriguez-Henche; Humberto Rodriguez-Rocha; Jeroen Roelofs; Robert S Rogers; Vladimir V Rogov; Ana I Rojo; Krzysztof Rolka; Vanina Romanello; Luigina Romani; Alessandra Romano; Patricia S Romano; David Romeo-Guitart; Luis C Romero; Montserrat Romero; Joseph C Roney; Christopher Rongo; Sante Roperto; Mathias T Rosenfeldt; Philip Rosenstiel; Anne G Rosenwald; Kevin A Roth; Lynn Roth; Steven Roth; Kasper M A Rouschop; Benoit D Roussel; Sophie Roux; Patrizia Rovere-Querini; Ajit Roy; Aurore Rozieres; Diego Ruano; David C Rubinsztein; Maria P Rubtsova; Klaus Ruckdeschel; Christoph Ruckenstuhl; Emil Rudolf; Rüdiger Rudolf; Alessandra Ruggieri; Avnika Ashok Ruparelia; Paola Rusmini; Ryan R Russell; Gian Luigi Russo; Maria Russo; Rossella Russo; Oxana O Ryabaya; Kevin M Ryan; Kwon-Yul Ryu; Maria Sabater-Arcis; Ulka Sachdev; Michael Sacher; Carsten Sachse; Abhishek Sadhu; Junichi Sadoshima; Nathaniel Safren; Paul Saftig; Antonia P Sagona; Gaurav Sahay; Amirhossein Sahebkar; Mustafa Sahin; Ozgur Sahin; Sumit Sahni; Nayuta Saito; Shigeru Saito; Tsunenori Saito; Ryohei Sakai; Yasuyoshi Sakai; Jun-Ichi Sakamaki; Kalle Saksela; Gloria Salazar; Anna Salazar-Degracia; Ghasem H Salekdeh; Ashok K Saluja; Belém Sampaio-Marques; Maria Cecilia Sanchez; Jose A Sanchez-Alcazar; Victoria Sanchez-Vera; Vanessa Sancho-Shimizu; J Thomas Sanderson; Marco Sandri; Stefano Santaguida; Laura Santambrogio; Magda M Santana; Giorgio Santoni; Alberto Sanz; Pascual Sanz; Shweta Saran; Marco Sardiello; Timothy J Sargeant; Apurva Sarin; Chinmoy Sarkar; Sovan Sarkar; Maria-Rosa Sarrias; Surajit Sarkar; Dipanka Tanu Sarmah; Jaakko Sarparanta; Aishwarya Sathyanarayan; Ranganayaki Sathyanarayanan; K Matthew Scaglione; Francesca Scatozza; Liliana Schaefer; Zachary T Schafer; Ulrich E Schaible; Anthony H V Schapira; Michael Scharl; Hermann M Schatzl; Catherine H Schein; Wiep Scheper; David Scheuring; Maria Vittoria Schiaffino; Monica Schiappacassi; Rainer Schindl; Uwe Schlattner; Oliver Schmidt; Roland Schmitt; Stephen D Schmidt; Ingo Schmitz; Eran Schmukler; Anja Schneider; Bianca E Schneider; Romana Schober; Alejandra C Schoijet; Micah B Schott; Michael Schramm; Bernd Schröder; Kai Schuh; Christoph Schüller; Ryan J Schulze; Lea Schürmanns; Jens C Schwamborn; Melanie Schwarten; Filippo Scialo; Sebastiano Sciarretta; Melanie J Scott; Kathleen W Scotto; A Ivana Scovassi; Andrea Scrima; Aurora Scrivo; David Sebastian; Salwa Sebti; Simon Sedej; Laura Segatori; Nava Segev; Per O Seglen; Iban Seiliez; Ekihiro Seki; Scott B Selleck; Frank W Sellke; Joshua T Selsby; Michael Sendtner; Serif Senturk; Elena Seranova; Consolato Sergi; Ruth Serra-Moreno; Hiromi Sesaki; Carmine Settembre; Subba Rao Gangi Setty; Gianluca Sgarbi; Ou Sha; John J Shacka; Javeed A Shah; Dantong Shang; Changshun Shao; Feng Shao; Soroush Sharbati; Lisa M Sharkey; Dipali Sharma; Gaurav Sharma; Kulbhushan Sharma; Pawan Sharma; Surendra Sharma; Han-Ming Shen; Hongtao Shen; Jiangang Shen; Ming Shen; Weili Shen; Zheni Shen; Rui Sheng; Zhi Sheng; Zu-Hang Sheng; Jianjian Shi; Xiaobing Shi; Ying-Hong Shi; Kahori Shiba-Fukushima; Jeng-Jer Shieh; Yohta Shimada; Shigeomi Shimizu; Makoto Shimozawa; Takahiro Shintani; Christopher J Shoemaker; Shahla Shojaei; Ikuo Shoji; Bhupendra V Shravage; Viji Shridhar; Chih-Wen Shu; Hong-Bing Shu; Ke Shui; Arvind K Shukla; Timothy E Shutt; Valentina Sica; Aleem Siddiqui; Amanda Sierra; Virginia Sierra-Torre; Santiago Signorelli; Payel Sil; Bruno J de Andrade Silva; Johnatas D Silva; Eduardo Silva-Pavez; Sandrine Silvente-Poirot; Rachel E Simmonds; Anna Katharina Simon; Hans-Uwe Simon; Matias Simons; Anurag Singh; Lalit P Singh; Rajat Singh; Shivendra V Singh; Shrawan K Singh; Sudha B Singh; Sunaina Singh; Surinder Pal Singh; Debasish Sinha; Rohit Anthony Sinha; Sangita Sinha; Agnieszka Sirko; Kapil Sirohi; Efthimios L Sivridis; Panagiotis Skendros; Aleksandra Skirycz; Iva Slaninová; Soraya S Smaili; Andrei Smertenko; Matthew D Smith; Stefaan J Soenen; Eun Jung Sohn; Sophia P M Sok; Giancarlo Solaini; Thierry Soldati; Scott A Soleimanpour; Rosa M Soler; Alexei Solovchenko; Jason A Somarelli; Avinash Sonawane; Fuyong Song; Hyun Kyu Song; Ju-Xian Song; Kunhua Song; Zhiyin Song; Leandro R Soria; Maurizio Sorice; Alexander A Soukas; Sandra-Fausia Soukup; Diana Sousa; Nadia Sousa; Paul A Spagnuolo; Stephen A Spector; M M Srinivas Bharath; Daret St Clair; Venturina Stagni; Leopoldo Staiano; Clint A Stalnecker; Metodi V Stankov; Peter B Stathopulos; Katja Stefan; Sven Marcel Stefan; Leonidas Stefanis; Joan S Steffan; Alexander Steinkasserer; Harald Stenmark; Jared Sterneckert; Craig Stevens; Veronika Stoka; Stephan Storch; Björn Stork; Flavie Strappazzon; Anne Marie Strohecker; Dwayne G Stupack; Huanxing Su; Ling-Yan Su; Longxiang Su; Ana M Suarez-Fontes; Carlos S Subauste; Selvakumar Subbian; Paula V Subirada; Ganapasam Sudhandiran; Carolyn M Sue; Xinbing Sui; Corey Summers; Guangchao Sun; Jun Sun; Kang Sun; Meng-Xiang Sun; Qiming Sun; Yi Sun; Zhongjie Sun; Karen K S Sunahara; Eva Sundberg; Katalin Susztak; Peter Sutovsky; Hidekazu Suzuki; Gary Sweeney; J David Symons; Stephen Cho Wing Sze; Nathaniel J Szewczyk; Anna Tabęcka-Łonczynska; Claudio Tabolacci; Frank Tacke; Heinrich Taegtmeyer; Marco Tafani; Mitsuo Tagaya; Haoran Tai; Stephen W G Tait; Yoshinori Takahashi; Szabolcs Takats; Priti Talwar; Chit Tam; Shing Yau Tam; Davide Tampellini; Atsushi Tamura; Chong Teik Tan; Eng-King Tan; Ya-Qin Tan; Masaki Tanaka; Motomasa Tanaka; Daolin Tang; Jingfeng Tang; Tie-Shan Tang; Isei Tanida; Zhipeng Tao; Mohammed Taouis; Lars Tatenhorst; Nektarios Tavernarakis; Allen Taylor; Gregory A Taylor; Joan M Taylor; Elena Tchetina; Andrew R Tee; Irmgard Tegeder; David Teis; Natercia Teixeira; Fatima Teixeira-Clerc; Kumsal A Tekirdag; Tewin Tencomnao; Sandra Tenreiro; Alexei V Tepikin; Pilar S Testillano; Gianluca Tettamanti; Pierre-Louis Tharaux; Kathrin Thedieck; Arvind A Thekkinghat; Stefano Thellung; Josephine W Thinwa; V P Thirumalaikumar; Sufi Mary Thomas; Paul G Thomes; Andrew Thorburn; Lipi Thukral; Thomas Thum; Michael Thumm; Ling Tian; Ales Tichy; Andreas Till; Vincent Timmerman; Vladimir I Titorenko; Sokol V Todi; Krassimira Todorova; Janne M Toivonen; Luana Tomaipitinca; Dhanendra Tomar; Cristina Tomas-Zapico; Sergej Tomić; Benjamin Chun-Kit Tong; Chao Tong; Xin Tong; Sharon A Tooze; Maria L Torgersen; Satoru Torii; Liliana Torres-López; Alicia Torriglia; Christina G Towers; Roberto Towns; Shinya Toyokuni; 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Bo Wang; Chao-Yung Wang; Chen Wang; Chenran Wang; Chenwei Wang; Cun-Yu Wang; Dong Wang; Fangyang Wang; Feng Wang; Fengming Wang; Guansong Wang; Han Wang; Hao Wang; Hexiang Wang; Hong-Gang Wang; Jianrong Wang; Jigang Wang; Jiou Wang; Jundong Wang; Kui Wang; Lianrong Wang; Liming Wang; Maggie Haitian Wang; Meiqing Wang; Nanbu Wang; Pengwei Wang; Peipei Wang; Ping Wang; Ping Wang; Qing Jun Wang; Qing Wang; Qing Kenneth Wang; Qiong A Wang; Wen-Tao Wang; Wuyang Wang; Xinnan Wang; Xuejun Wang; Yan Wang; Yanchang Wang; Yanzhuang Wang; Yen-Yun Wang; Yihua Wang; Yipeng Wang; Yu Wang; Yuqi Wang; Zhe Wang; Zhenyu Wang; Zhouguang Wang; Gary Warnes; Verena Warnsmann; Hirotaka Watada; Eizo Watanabe; Maxinne Watchon; Anna Wawrzyńska; Timothy E Weaver; Grzegorz Wegrzyn; Ann M Wehman; Huafeng Wei; Lei Wei; Taotao Wei; Yongjie Wei; Oliver H Weiergräber; Conrad C Weihl; Günther Weindl; Ralf Weiskirchen; Alan Wells; Runxia H Wen; Xin Wen; Antonia Werner; Beatrice Weykopf; Sally P Wheatley; J Lindsay Whitton; 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Authors: Kyle Gettler; Rachel Levantovsky; Arden Moscati; Mamta Giri; Yiming Wu; Nai-Yun Hsu; Ling-Shiang Chuang; Aleksejs Sazonovs; Suresh Venkateswaran; Ujunwa Korie; Colleen Chasteau; Richard H Duerr; Mark S Silverberg; Scott B Snapper; Mark J Daly; Dermot P McGovern; Steven R Brant; John D Rioux; Subra Kugathasan; Carl A Anderson; Yuval Itan; Judy H Cho Journal: Gastroenterology Date: 2020-12-24 Impact factor: 33.883
Authors: John Greene; Anne-Marie Baird; Orla Casey; Lauren Brady; Gordon Blackshields; Marvin Lim; Odharnaith O'Brien; Steven G Gray; Raymond McDermott; Stephen P Finn Journal: Sci Rep Date: 2019-07-24 Impact factor: 4.379