Literature DB >> 29779334

[Effect of iron chelation therapy on EPO-Stat5 signaling pathway and Treg expression in IPSS low risk/medium risk-1 group myelodysplastic syndrome patients].

Y Zhang, S Han, C Guo, Q X Zhang, C K Chang1.   

Abstract

Entities:  

Year:  2018        PMID: 29779334      PMCID: PMC7342130          DOI: 10.3760/cma.j.issn.0253-2727.2018.04.017

Source DB:  PubMed          Journal:  Zhonghua Xue Ye Xue Za Zhi        ISSN: 0253-2727


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骨髓增生异常综合征(MDS)为造血干细胞克隆性疾病,以骨髓病态造血为特征。低危/中危-1 MDS属于疾病早期,其病理表现以骨髓造血细胞过度增殖和凋亡为主,贫血是常见的临床特征之一。长期输血是MDS患者出现铁过载的主要原因[1]。部分铁过载的MDS患者接受袪铁治疗后血常规可恢复正常,能不依赖输血长期生存[2]。红细胞生成依赖EPO-EPOR-Janus激酶2-转录激活因子5(Stat5)信号转导。Foxp3是调节性T细胞(Terg细胞)特异性标志物,其表达与Stat5的调控有关[3],在MDS中的表达尚有争议。铁过载对EPO-Stat5信号通路及Terg细胞表达的影响尚不清楚。本研究我们初步探讨祛铁治疗对IPSS低危/中危-1 MDS患者EPOStat5、Terg细胞表达及红细胞生成的影响,现报道如下。

病例与方法

1.病例:以2014年3月至2018年1月我院诊治的IPSS分组为低危/中危-1的42例MDS患者为研究对象,男24例,女18例,中位年龄54(32~81)岁。MDS诊断、分型及预后分组参照文献[4]标准,其中难治性血细胞减少伴单系发育异常(RCUD)1例,难治性贫血伴环状铁粒幼红细胞(RARS)6例,难治性血细胞减少伴多系发育异常(RCMD)35例。排除活动性炎症、肝病、肿瘤、溶血和酗酒等因素的影响,以血清铁蛋白(SF)>1 000 µg/L为铁过载[5]。42例MDS患者中,铁过载组22例,对照组20例。本研究征得我院伦理委员会批准,样本的取得均经患者知情同意。 2.治疗:铁过载组中18例患者接受甲磺酸去铁胺(20~60 mg·kg−1·d−1,持续皮下泵入12 h)或地拉罗司(30 mg·kg−1·d−1,口服)袪铁治疗,14 d为1个疗程,治疗4个疗程复查相关指标进行评估。全部42例患者检测指标近1个月内未接受重组EPO治疗,祛铁治疗期间患者仅接受输血、雄激素、益血生胶囊等促造血支持治疗。 3.标本采集及处理:采集全部患者治疗前及18例袪铁治疗组患者治疗4个疗程时外周血5 ml,EDTA抗凝。取其中2 ml常规分离血浆,行ELISA检测;取其中200 µl提取总RNA,行PCR检测;余下用淋巴细胞分离液收集单个核细胞,调整细胞数为1×106行流式细胞术检测。 4.血红蛋白、网织红细胞、促红细胞生成素及铁代谢指标检测:采用Sysmex XE-2100全自动血细胞分析仪测定HGB、网织红细胞绝对计数(Ret)。放射免疫法测定EPO、血清铁蛋白(SF)含量,亚铁嗪显色法测定血清铁(SI)、总铁结合力(TIBC)。 5.流式细胞术检测外周血CD3+CD4+ T细胞表面CD25Foxp3表达:常规处理后实验管加入鼠抗人FITC-CD3、PerCP-CD4、APC-CD25、PE-Foxp3单抗各20 µl,对照管加入FITC-小鼠IgG2a、PerCP-小鼠IgG2a、APC-小鼠IgG2a、PE-小鼠IgG2a单抗各20 µl,上FACS Calibur流式细胞仪进行检测,抗体及仪器均为美国BD公司产品,通过CELL Quest软件分析CD3+CD4+/CD3+、CD3+CD4+CD25+/CD3+CD4+、CD3+CD4+CD25+Foxp3+/CD3+CD4+细胞比例。 6.ELISA法检测血浆中p-STAT5浓度:采用人磷酸化(p)-Stat5 ELISA试剂盒(美国BIM Bioscience公司产品),实验要求和步骤严格按照说明书进行,450 nm波长处测定各孔的吸光度值。绘制标准曲线,计算样品p-Stat5浓度。 7.RQ-PCR检测外周血中Stat5Foxp3 mRNA表达:Stat5(货号DHS065456)、Foxp3(货号DHS067532)、ACTB(货号DHS579991)引物由上海杏园生物科技有限公司合成。提取单个核细胞的总RNA,按照TransScript Green One-Step qRT-PCR SuperMix试剂盒(北京全式金生物技术有限公司产品)进行PCR反应。反应条件:逆转录,45 °C 5 min;预变性,94 °C 30 s;40个循环的扩增,95 °C 10 s,60 °C 30 s。以ACTB为内参照,使用LightCycler相对定量软件计算目的基因的相对定量表达。 8.统计学处理:应用SPSS 19.0软件进行统计分析,非正态分布数据以中位数(四分位距)表示,铁过载组与对照组采用Mann-Whitney U检验进行组间比较,袪铁治疗前后数据采用两相关样本的Wilcoxon检验进行组间比较;正态分布数据以±s表示,铁过载组与对照组比较采用独立样本的t检验,袪铁治疗前后数据采用配对t检验进行比较。P<0.05为差异有统计学意义。

结果

1.铁过载对较低危MDS患者铁代谢指标、EPOStat5、Treg细胞表达及红细胞生成的影响:与对照组相比,铁过载组SF、SI及EPO水平明显升高,TIBC、Stat5 mRNA相对定量、p-Stat5RetHGB表达明显降低(P值均<0.05)。与对照组Treg细胞表达比较,铁过载组CD3+CD4+/CD3+比例升高,Foxp3 mRNA相对定量、CD3+CD4+CD25+/CD3+CD4+及CD3+CD4+CD25+Foxp3+/CD3+CD4+比例降低(P值均<0.05)(表1)。
表1

低危/中危-1骨髓增生异常综合征患者铁过载组和对照组铁代谢指标、EPO、Stat5、Treg细胞表达及红细胞生成比较[±s或M(Q)]

组别例数SF(µg/L)SI(µmol/L)TIBC(µmol/L)EPO(U/L)Stat5 mRNA(×10−3磷酸化Stat5(ng/L)
铁过载组224 382.53±67.2639.84±9.8333.58±6.744 454.58±66.741.70(1.23)30.95±11.98
对照组20386.32±19.8130.81±7.5247.22±7.63798.93±28.2716.29(8.50)167.54±52.08

统计量255.5683.316−6.152234.788−4.998−11.457
P<0.0010.002<0.001<0.001<0.001<0.001

注:SF:血清铁蛋白;SI:血清铁;TIBC:总铁结合力;Ret:网织红细胞绝对计数;正常参考值范围:SF 22~322 µg/L,SI 12.5~32.2 µmol/L,TIBC 45~82 µmol/L,EPO 4.3~29.0 U/L,Ret(28.7~75.0)×109/L

注:SF:血清铁蛋白;SI:血清铁;TIBC:总铁结合力;Ret:网织红细胞绝对计数;正常参考值范围:SF 22~322 µg/L,SI 12.5~32.2 µmol/L,TIBC 45~82 µmol/L,EPO 4.3~29.0 U/L,Ret(28.7~75.0)×109/L 2.祛铁治疗后铁代谢指标、EPOStat5、Treg细胞表达及红细胞生成的变化:祛铁治疗后SF、SI、EPO较治疗前明显下降,TIBC、Stat5 mRNA相对定量、p-Stat5RetHGB较前升高(P值均<0.05)。Treg细胞表达比较,治疗后CD3+CD4+/CD3+比例较前降低,Foxp3 mRNA相对定量、CD3+CD4+CD25+/CD3+CD4+及CD3+CD4+CD25+Foxp3+/CD3+CD4+比例较前明显升高(P值均<0.05)(表2)。
表2

18例低危/中危-1骨髓增生异常综合征铁过载患者接受祛铁治疗前后铁代谢指标、EPO、Stat5、Treg细胞表达及红细胞生成比较[±s或M(Q)]

组别SF(µg/L)SI(µmol/L)TIBC(µmol/L)EPO(U/L)Stat5 mRNA(×10−3磷酸化Stat5(ng/L)
祛铁前4 536.56±53.1640.59±8.6232.27±7.494 663.77±68.291.69(0.91)29.82±12.37
祛铁后2 853.32±47.6631.96±7.8340.62±8.172 624.87±51.234.50(1.49)74.62±19.55

统计量16.74012.631−9.54411.477−3.724−14.514
P<0.001<0.001<0.001<0.001<0.001<0.001

注:SF:血清铁蛋白;SI:血清铁;TIBC:总铁结合力;Ret:网织红细胞绝对计数;正常参考值范围:SF 22~322 µg/L,SI 12.5~32.2 µmol/L,TIBC 45~82 µmol/L,EPO 4.3~29.0 U/L,Ret(28.7~75.0)×109/L

注:SF:血清铁蛋白;SI:血清铁;TIBC:总铁结合力;Ret:网织红细胞绝对计数;正常参考值范围:SF 22~322 µg/L,SI 12.5~32.2 µmol/L,TIBC 45~82 µmol/L,EPO 4.3~29.0 U/L,Ret(28.7~75.0)×109/L

讨论

长期输血依赖的MDS患者会出现铁过载,而骨髓无效造血也会导致原发铁过载[6]。本研究结果显示,在对照组非输血依赖的MDS患者中,SF也较正常参考值偏高,可能与低危/中危-1 MDS患者骨髓无效造血有关。铁过载组患者SF明显增高,但SI未同比例升高,可能与铁从巨噬细胞向血浆释放障碍有关。高铁浓度引起铁调素水平升高,可减少铁从巨噬细胞向血浆释放。继发性血色病造成转铁蛋白合成不足,可导致TIBC降低。祛铁治疗后TIBC较前升高。 EPOEPO受体结合后可使受体胞内区的Stat5酪氨酸发生磷酸化而被激活,活化的胞内p-Stat5蛋白引发下游信号转导通路,使红细胞进一步增殖分化成熟[7]。Stat5还作为祖红细胞表面Epo-R下游区抗凋亡信号子发挥抗凋亡作用,维持祖红细胞的生存[8]。铁过载组患者EPO浓度明显升高,Stat5 mRNA和p-Stat5的表达却较对照组明显减少,表明铁过载可能导致了EPO抵抗,抑制了EPO-Stat5信号通路的表达。体内循环EPO水平升高,可能是对信号通路缺陷的一个补偿效应。过量铁促使线粒体内的蓄积铁(FtMt)高表达,FtMt可通过减少p-Stat5促进细胞调亡,并将胞质内游离铁隔离至线粒体内干扰血红素合成[9]。FtMt高表达时产生的病理效应,可能是导致Stat5减少的原因。祛铁治疗后,Stat5 mRNA和p-Stat5表达升高,可能与体内活性氧减少,线粒体内FtMt降低,减少了对Stat5的抑制有关。 激活的T细胞介导的免疫损伤是低危/中危-1 MDS重要发病机制之一。MDS患者自身T淋巴细胞在体外可以抑制红系祖细胞增殖,从骨髓细胞中移除T细胞则可以增强集落的形成[10]。Treg细胞是抑制免疫反应的重要细胞。T细胞受体诱导CD25IL-2受体α链)高表达,IL-2受体激活Stat5Stat5Foxp3启动子结合,诱导Foxp3表达。MDS早期Treg细胞不能有效归巢至骨髓去调节免疫反应[11],可能是导致T细胞过度活化介导免疫损伤的原因之一。铁过载组CD3+CD4+/CD3+细胞比例升高,表明T细胞免疫失衡加重。Foxp3 mRNA及CD3+CD4+CD25+Foxp3+/CD3+CD4+表达较对照组下降,祛铁后较前升高,表明铁过载可能影响Foxp3的表达。CD3+CD4+CD25+/CD3+CD4+比例降低,显示CD25表达受抑制。Foxp3低表达可能受Stat5降低的影响。Treg细胞低表达加重活化T细胞造成的免疫损伤。 综上所述,祛铁治疗可上调Stat5 mRNA和p-Stat5的表达,部分恢复EPO-Stat5通路对红系造血的作用,增强红系造血的功能;同时诱导CD3+CD4+ T细胞CD25Foxp3表达,平衡免疫应答,减少T细胞介导的免疫损伤对红系造血的负面影响。
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Review 1.  JAKs, STATs and Src kinases in hematopoiesis.

Authors:  Sushil G Rane; E Premkumar Reddy
Journal:  Oncogene       Date:  2002-05-13       Impact factor: 9.867

Review 2.  Positive effects on hematopoiesis in patients with myelodysplastic syndrome receiving deferasirox as oral iron chelation therapy: a brief review.

Authors:  Roberto Guariglia; Maria Carmen Martorelli; Oreste Villani; Giuseppe Pietrantuono; Giovanna Mansueto; Fiorella D'Auria; Vitina Grieco; Gabriella Bianchino; Rosa Lerose; Giovanni Battista Bochicchio; Pellegrino Musto
Journal:  Leuk Res       Date:  2010-12-23       Impact factor: 3.156

3.  [Expert consensus on diagnosis and treatment of myelodysplastic syndrome (2014)].

Authors: 
Journal:  Zhonghua Xue Ye Xue Za Zhi       Date:  2014-11

4.  IL-2 receptor beta-dependent STAT5 activation is required for the development of Foxp3+ regulatory T cells.

Authors:  Matthew A Burchill; Jianying Yang; Christine Vogtenhuber; Bruce R Blazar; Michael A Farrar
Journal:  J Immunol       Date:  2007-01-01       Impact factor: 5.422

5.  Over-expression of mitochondrial ferritin affects the JAK2/STAT5 pathway in K562 cells and causes mitochondrial iron accumulation.

Authors:  Paolo Santambrogio; Benedetta Gaia Erba; Alessandro Campanella; Anna Cozzi; Vincenza Causarano; Laura Cremonesi; Anna Gallì; Matteo Giovanni Della Porta; Rosangela Invernizzi; Sonia Levi
Journal:  Haematologica       Date:  2011-06-28       Impact factor: 9.941

6.  Preferential suppression of trisomy 8 compared with normal hematopoietic cell growth by autologous lymphocytes in patients with trisomy 8 myelodysplastic syndrome.

Authors:  Elaine M Sloand; Lori Mainwaring; Monika Fuhrer; Shakti Ramkissoon; Antonio M Risitano; Keyvan Keyvanafar; Jun Lu; Atanu Basu; A John Barrett; Neal S Young
Journal:  Blood       Date:  2005-04-12       Impact factor: 22.113

7.  Stat5 activation enables erythropoiesis in the absence of EpoR and Jak2.

Authors:  Florian Grebien; Marc A Kerenyi; Boris Kovacic; Thomas Kolbe; Verena Becker; Helmut Dolznig; Klaus Pfeffer; Ursula Klingmüller; Mathias Müller; Hartmut Beug; Ernst W Müllner; Richard Moriggl
Journal:  Blood       Date:  2008-01-31       Impact factor: 22.113

8.  Kinetics, function and bone marrow trafficking of CD4+CD25+FOXP3+ regulatory T cells in myelodysplastic syndromes (MDS).

Authors:  I Kotsianidis; I Bouchliou; E Nakou; E Spanoudakis; D Margaritis; A V Christophoridou; A Anastasiades; C Tsigalou; G Bourikas; A Karadimitris; C Tsatalas
Journal:  Leukemia       Date:  2008-11-20       Impact factor: 11.528

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