Literature DB >> 27666544

[Methylation Status of the SOCS3 Gene Promoter in H2228 Cells and 
EML4-ALK-positive Lung Cancer Tissues].

Chunlai Liu1, Yongwen Li2, Yunlong Dong1, Hongbing Zhang1, Ying Li2, Hongyu Liu2, Jun Chen3.   

Abstract

BACKGROUND: The EML4-ALK fusion gene is a newly discovered driver gene of non-small cell lung cancer and exhibits special clinical and pathological features. The JAK-STAT signaling pathway, an important downstream signaling pathway of EML4-ALK, is aberrantly sustained and activated in EML4-ALK-positive lung cancer cells fusion gene, but the underlying reason remains unknown. The suppressor of cytokine signaling (SOCS) is a negative regulatory factor that mainly inhibits the proliferation, differentiation, and induction of apoptotic cells by inhibiting the JAK-STAT signaling pathway. The aberrant methylation of the SOCS gene leads to inactivation of tumors and abnormal activation of the JAK2-STAT signaling pathway. The aim of this study is to investigate the methylation status of the SOCS3 promoter in EML4-ALK-positive H2228 cells and lung cancer tissues.
METHODS: The methylation status of the SOCS3 promoter in EML4-ALK-positive H2228 lung cancer cells and lung cancer tissues was detected by methylation-specific PCR (MSP) analysis and verified by DNA sequencing. The expression levels of SOCS3 in H2228 cells were detected by Western blot and Real-time PCR analyses after treatment with the DNA methyltransferase inhibitor 5'-Aza-dC.
RESULTS: MSP and DNA sequencing assay results indicated the presence of SOCS3 promoter methylation in H2228 cells as well as in three cases of seven EML4-ALK-positive lung cancer tissues. The expression level of SOCS3 significantly increased in H2228 cells after 5'-Aza-dC treatment.
CONCLUSIONS: The aerrant methylation of the SOCS3 promoter region in EML4-ALK (+) H2228 cells and lung cancer tissues may be significantly involved in the pathogenesis of EML4-ALK-positive lung cancer.

Entities:  

Mesh:

Substances:

Year:  2016        PMID: 27666544      PMCID: PMC5972959          DOI: 10.3779/j.issn.1009-3419.2016.09.01

Source DB:  PubMed          Journal:  Zhongguo Fei Ai Za Zhi        ISSN: 1009-3419


肺癌是我国发病率和死亡率增长最快,对人类健康和生命威胁最大的恶性肿瘤,总的5年生存率仅10%左右[。现在的研究[表明,表皮生长因子受体(epidermal growth factor receptor, EGFR)、KRAS(kirsten rat sarcoma viral oncogene, K-ras)、人类棘皮动物微管相关蛋白样4(echinoderm microtubule-associated-protein-like 4, EML4)和人类间变性淋巴瘤激酶(anaplastic lymphoma kinase, ALK)重排形成的融合基因EML4-ALK等基因是肺癌发生发展的驱动基因(driver gene),应用针对这些驱动基因及信号通路的药物进行分子靶向治疗,在取得明显疗效的同时又避免对正常细胞伤害,显示了诱人的治疗前景。EML4-ALK融合基因2007年由日本学者发现,定位于2号染色体的短臂上(2p21和2p23)[。在非小细胞肺癌(non-small cell lung cancer, NSCLC)人群中EML4-ALK阳性率约为3%-7%左右,但在女性、无或仅少量吸烟史的肺腺癌患者中EML4-ALK融合基因阳性率高达15%[。 动物实验提示EML4-ALK融合基因具有潜在致瘤性,是肺癌发生的驱动基因,但其致瘤机制尚未阐明。EML4-ALK融合基因阳性患者对表皮生长因子受体酪氨酸激酶抑制剂(EGFR-tyrosine kinase inhibitors, EGFR-TKIs)原发性耐药,而可能对ALK抑制剂有效[。2011年8月美国食品药品管理局批准ALK抑制剂克唑替尼用于局部晚期或转移性ALK阳性NSCLC的一线治疗,对于ALK阳性的NSCLC患者,克唑替尼显示出了一定的治疗活性,并可延长患者的生存期,其无进展生存期为9.7个月,但是,克唑替尼与EGFR-TKI一样,使用一段时间后会产生获得性耐药,而揭示EML4-ALK的致瘤机理对EML4-ALK患者的治疗及克服耐药将产生重要作用[。 细胞因子信号转导抑制因子(suppressor of cytokine signaling, SOCS)是一类在细胞信号转导过程中起重要作用的负调控因子,主要通过抑制JAK-STAT(janus protein tyrosine kinase, signal transducers and activators of transcription)等信号通路的持续激活来调控细胞的增殖、分化和凋亡[。由于JAK-STAT信号通路是多种肿瘤驱动基因重要下游信号通路,近年来的研究发现,SOCS启动子区异常甲基化在多种肿瘤发生发展中起重要作用,包括肝癌、胃癌、肺癌和血液系统肿瘤等,但是在EML4-ALK融合基因阳性肺癌中的情况却未见报道[。本研究的目的在于探讨人类EML4-ALK融合基因阳性肺癌组织和细胞中SOCS3启动子异常甲基化情况,为进一步阐明SOCS3EML4-ALK阳性肺癌发生发展中的作用奠定基础。

材料与方法

细胞株及主要仪器

NSCLC细胞株H2228细胞,A549细胞购于ATCC、人正常肺上皮细胞BEAS-2B细胞、人胚胎肾上皮细胞HEK293细胞由天津医科大学总医院,天津市肺癌研究所保存;7例ALK阳性患者来自于天津医科大学总医院肺部肿瘤外科的手术病例。RMPI1640和DMEM培养基、胎牛血清及Trizol试剂购自Life Technologies公司(Carlsbad, CA, USA);实时荧光定量PCR试剂盒、Premix Ex TaqHotstart Version购自Takara公司(Dalian, China);反转录试剂盒购自Promega公司(Madison, WI, USA);QIAampDNA Mini Kit和EpiTect Bisulfite Kit购自Qiagen公司(Hilden, Germany);甲基转移酶抑制剂5’-氮杂-2’-脱氧胞苷(5’-Aza-dC)购自Sigma-Aldrich公司(Kansas, Missouri, USA)。

细胞培养及药物处理

HEK293细胞用含10%胎牛血清(fetal bovine serum, FBS)的DMEMdulbecco's modified eagle medium)培养,其他细胞均培养于含10%FBSRPMI-1640培养基。细胞培养于10 cm培养皿,37 ℃、5%CO2饱和湿度的培养箱中,0.25%胰酶-EDTAethylenediamine tetracetic acid)消化传代,所有实验均采用对数生长期细胞。5’-Aza-dC溶于二甲基亚砜(dimethyl sulphoxide, DMSO)溶液中,10 μmoL/L处理6孔板中细胞(每孔2×105细胞),每个浓度3个孔,处理72 h。

组织及细胞DNA提取

细胞及组织按QIAamp DNA Mini Kit说明书步骤进行DNA提取,DNA提取后琼脂糖电泳检测DNA纯度,并用紫外分光光度计进行定量。

甲基化特异性PCR(methylation-specific PCR, MSP)

基因组DNA亚硫酸盐修饰分别取800 ng

DNA按照EpiTect Bisulfite Kit(QINGEN)的说明书进行亚硫酸盐处理,反应在PCR仪上进行,处理条件:99 ℃、5 min,60 ℃、25 min,99 ℃、5 min,60 ℃、85 min,99℃、5 min,60 ℃、175 min,最后置20 ℃不超过24 h。纯化回收的DNA -20 ℃保存备用,用于甲基化特异PCR分析。

MSP-PCR扩增和产物的凝胶纯化取20 ng

DNA为模板进行启动子目的片段的扩增。采用巢式PCR法,第一轮PCR引物序列为: SOCS3-F 5'-GATTYGAGGGGGTTTAGTTTTAAGGA-3',SOCS3-R 5'-CCACTACCCCAAAAACCCTCTCCTAA-3',反应条件为:95 ℃、5 min,95 ℃、30 s,60 ℃、30 s,72 ℃、30 s,设置降落PCR,每个循环降落0.5 ℃,14个循环;再加20个循环的95 ℃、30 s,53 ℃、30 s,72 ℃、30 s。第二轮PCR取1 μL第一轮PCR产物为模板进行扩增,甲基化引物序列为:M-F 5'-GGAGATTTTAGGTTTTCGGAATATTTC-3',M-R 5'-CCCCCGAAACTACCTAAACGCCG-3',非甲基化引物序列为U-F 5'-GTTGGAGATTTTAGGTTTTTGGAATATTTT-3',U-R 5'-AAACCCCCAAAACTACCTAAACACCA-3',反应条件:95 ℃、5 min,95 ℃、30 s,55 ℃、30 s,72 ℃、30 s,30个循环;72 ℃、5 min,4 ℃保存。扩增产物经2%琼脂糖电泳进行鉴定,并设以双蒸水为模板的阴性对照。

亚硫酸盐测序上述PCR产物经回收纯化后,交由北京华大基因公司测序,根据甲基化位点的个数计算分析SOCS3基因启动子甲基化水平。

Real-time PCR

Trizol法常规提取5'-Aza-dC处理细胞总RNA,紫外分光光度仪定量,以Reverse Transcriptase Kit(Promega)将2 μg RNA反转成cDNA。20 ng cDNA为模板,与ABI SYBR Green Master Mix(ABI)及相应引物混合,置于实时荧光定量PCR仪Applied Biosystems 7900HT Fast Real-Time PCR System instrument and software(Applied Biosystems, USA)进行Real-time PCR反应。反应条件:95 ℃、20 s;40个PCR循环(95 ℃、10 s;60 ℃、20 s;72 ℃、10 s)。以PGK作为内参照,未处理样本作为矫正因子,数据采用2-ΔΔCT法进行分析,ΔCT=CT-CT(PGK),ΔΔCT=ΔCT(24 h、48 h、72 h)-ΔCT(0 h)(H2228A549、H460、B2B)[。

蛋白免疫印迹(Western blot)

RIPA裂解收集细胞蛋白溶液,BCA法测浓度,与5×SDS-PAGE蛋白缓冲液充分混匀,100 ℃煮沸10 min使蛋白变性后,取30 μg蛋白上样量上样,进行SDS-聚丙烯酰胺凝胶(SDS-PAGE)电泳,100 V转膜65 min、5%脱脂牛奶的1×TBST中室温封闭1 h,加入鼠抗人SOCS3单克隆抗体,1:500稀释,4 ℃孵育过夜。加HRP标记的二抗,室温孵育1 h,显色曝光[。

统计学方法

应用SPSS 21.0统计软件进行分析,同一细胞系两组间比较采用两样本均数t检验,P < 0.05为差异有统计学意义。

结果

SOC3启动子区CpG岛的查找及MSP引物设计

应用USUC数据库预测人SOCS3 DNA启动子序列并获取启动子上游2, 000 bp,再通过MethPrimer在线分析网站和Methyl Primer Expressv 1.0软件分析这段序列的CPG岛,采用标准:碱基对 > 300,GC > 50%,观察值/预测值> 0.6。结果显示SOCS3启动子的CpG岛长度545 bp,位于871 bp-1, 415 bp。通过Methyl Primer Expressv 1.0软件设计出PCR引物。

MSP法检测细胞和肺癌肿瘤组织中SOCS3启动子甲基化状态

提取7例EML4-ALK阳性肺癌患者肿瘤组织和EML4-ALK阳性肿瘤细胞H2228EML4-ALK阴性肿瘤细胞A549、HEK-293细胞、人胎盘细胞的DNA,应用重亚硫酸盐处理,未甲基化的胞嘧啶(C)将转变为尿嘧啶(U),而甲基化的胞嘧啶(C)不变。将上述经重亚硫酸盐处理后的DNA用MSP引物扩增,来检测SOCS3启动子区的甲基化情况。图 1所示MSP结果显示H2228细胞、A549细胞、HEK-293细胞、H460细胞和7例肿瘤组织中的3例SOCS3启动子区存在不同程度的甲基化,BEAS-2B细胞及人胎盘组织细胞中不存在SOCS3启动子区的甲基化情况。PCR产物经DNA测序分析,证实SOCS3启动子区存在DNA甲基化(图 2)。
1

MSP方法检测肺癌细胞株及EML4-ALK阳性肺癌样品中SOCS3基因启动子甲基化状态。M:甲基化特异;U:非甲基化特异

MSP assay for SOCS3 promoter in different lung cancer cell lines and EML4-ALK (+) lung cancer tissues. M:methylated-specific; U: unmethylated-specific.

2

H2228细胞SOCS3启动子MSP分析后测序验证

The MSP result of SOCS3 promotor were verified by DNA sequencing in H2228 cells

MSP方法检测肺癌细胞株及EML4-ALK阳性肺癌样品中SOCS3基因启动子甲基化状态。M:甲基化特异;U:非甲基化特异 MSP assay for SOCS3 promoter in different lung cancer cell lines and EML4-ALK (+) lung cancer tissues. M:methylated-specific; U: unmethylated-specific. H2228细胞SOCS3启动子MSP分析后测序验证 The MSP result of SOCS3 promotor were verified by DNA sequencing in H2228 cells

甲基转移酶抑制剂5’-Aza-dC处理,上调SOCS3表达为了进一步探讨DNA甲基化对SOCS3表达的调控情况,我们用甲基转移酶抑制剂5’-氮杂-2’-脱氧胞苷(5’-Aza-dC)处理上述细胞。以10 μm/孔连续处理不同的细胞72 h后分别提取RNA和蛋白,用Real-time PCR及Western blot检测SOCS3表达水平的变化情况,以DMSO处理组作为对照组。结果显示,与对照组相比,A549细胞和H2228细胞中SOCS3的表达水平有明显提高,分别提高了4.97倍(P < 0.05)和3.66(P < 0.05)倍。而在BEAS-2B细胞和H460细胞中SOCS3的表达则变化不明显甚至表现为降低(图 3)。进一步通过Western blot来验证去甲基化处理后SOCS3表达水平的变化,结果与Real-time PCR结果一致(图 4)。
3

Real-time PCR检测5'-Aza-dC处理不同肺癌细胞后,SOCS3表达水平的变化情况。*P < 0.05

The analysis of SOCS3 expression by Real-time PCR in human lung cancer cell lines after 5'-Aza-dC treatment. *P < 0.05

4

Western blot检测肺癌细胞株经5'-Aza-dC处理后SOCS3表达水平的变化

The analysis of SOCS3 expression by Western blot in human lung cancer cell lines after 5'-Aza-dC treatment

Real-time PCR检测5'-Aza-dC处理不同肺癌细胞后,SOCS3表达水平的变化情况。*P < 0.05 The analysis of SOCS3 expression by Real-time PCR in human lung cancer cell lines after 5'-Aza-dC treatment. *P < 0.05 Western blot检测肺癌细胞株经5'-Aza-dC处理后SOCS3表达水平的变化 The analysis of SOCS3 expression by Western blot in human lung cancer cell lines after 5'-Aza-dC treatment

讨论

SOCS3是经典的JAK-STAT信号通路负反馈调节蛋白之一,其可以通过抑制STAT的磷酸化及其二聚体的形成或者直接抑制JAK的磷酸化来负向调节JAK-STAT通路,从而抑制细胞的持续增殖和分化[。SOCS功能异常导致其对JAK-STAT通路的抑制作用随之消失,而启动子异常甲基化是SOCS3功能异常的重要机制。 SOCS家族分子的超甲基化在多种肿瘤中被发现,如肺癌、肝癌、前列腺癌、食管癌等[。比如,日本的学者用实时定量PCR和免疫印迹的方法发现肝癌组织中SOCS3的表达低于正常肝组织,并且通过特异性敲除小鼠SOCS3基因,使得SOCS3STAT3的抑制作用消失导致STAT3持续活化,其抗细胞凋亡的作用随之增强,致癌物诱导肝癌发生的作用也随之增加,证明了超甲基化导致的SOCS3表达缺失与肝癌的发生有关[。 我们的研究证实在EML4-ALK阳性细胞H2228及部分EML4-ALK阳性患者肿瘤组织中存在SOCS3基因的异常甲基化,转甲基化酶抑制剂5’-Aza-dC处理能在mRNA水平和蛋白水平增加SOCS3的表达,MSP及基因测序分析进一步证实这些细胞中存在异常甲基化修饰。因此,在上述肺癌细胞中SOCS3的表达受异常甲基化调控。 由于SOCS蛋白在肿瘤发生发展中的作用,现在已经有学者尝试将SOCS家族蛋白激活剂用于临床前研究,并取得了一定的进展,比如,有研究[指出肿瘤的治疗中激活SOCS后再用JAK抑制剂的效果比单用JAK激酶抑制剂的效果要好;Kim等[学者发现恢复SOCS1SOCS3的表达能够增加宫颈癌细胞对放疗的敏感性;在NSCLC中也发现恢复SOCS3的表达不仅能够促进肿瘤细胞的凋亡,而且还能增加其对放疗的敏感性。因此提示针对SOCS的靶向治疗的研究,将会为肿瘤靶向治疗提供新的思路。
  32 in total

1.  Epigenetic alteration of the SOCS1 gene in hepatocellular carcinoma.

Authors:  Pei-Yi Chu; Chung-Min Yeh; Nicholas C Hsu; Ya-Sian Chang; Jan-Gowth Chang; Kun-Tu Yeh
Journal:  Swiss Med Wkly       Date:  2010-07-15       Impact factor: 2.193

2.  SOCS-1 gene delivery cooperates with cisplatin plus pemetrexed to exhibit preclinical antitumor activity against malignant pleural mesothelioma.

Authors:  Kota Iwahori; Satoshi Serada; Minoru Fujimoto; Barry Ripley; Shintaro Nomura; Hiroyuki Mizuguchi; Kazuki Shimada; Tsuyoshi Takahashi; Ichiro Kawase; Tadamitsu Kishimoto; Tetsuji Naka
Journal:  Int J Cancer       Date:  2012-05-17       Impact factor: 7.396

3.  A family of cytokine-inducible inhibitors of signalling.

Authors:  R Starr; T A Willson; E M Viney; L J Murray; J R Rayner; B J Jenkins; T J Gonda; W S Alexander; D Metcalf; N A Nicola; D J Hilton
Journal:  Nature       Date:  1997-06-26       Impact factor: 49.962

4.  Deletion of the SOCS3 gene in liver parenchymal cells promotes hepatitis-induced hepatocarcinogenesis.

Authors:  Hisanobu Ogata; Takashi Kobayashi; Takatoshi Chinen; Hiromi Takaki; Takahito Sanada; Yasumasa Minoda; Keiko Koga; Giichi Takaesu; Yoshihiko Maehara; Mitsuo Iida; Akihiko Yoshimura
Journal:  Gastroenterology       Date:  2006-07       Impact factor: 22.682

5.  Antiproliferative effect of SOCS-1 through the suppression of STAT3 and p38 MAPK activation in gastric cancer cells.

Authors:  Yoshihito Souma; Toshirou Nishida; Satoshi Serada; Kota Iwahori; Tsuyoshi Takahashi; Minoru Fujimoto; Barry Ripley; Kiyokazu Nakajima; Yasuaki Miyazaki; Masaki Mori; Yuichiro Doki; Yoshiki Sawa; Tetsuji Naka
Journal:  Int J Cancer       Date:  2011-12-14       Impact factor: 7.396

6.  Cancer statistics, 2003.

Authors:  Ahmedin Jemal; Taylor Murray; Alicia Samuels; Asma Ghafoor; Elizabeth Ward; Michael J Thun
Journal:  CA Cancer J Clin       Date:  2003 Jan-Feb       Impact factor: 508.702

7.  Identification of the transforming EML4-ALK fusion gene in non-small-cell lung cancer.

Authors:  Manabu Soda; Young Lim Choi; Munehiro Enomoto; Shuji Takada; Yoshihiro Yamashita; Shunpei Ishikawa; Shin-ichiro Fujiwara; Hideki Watanabe; Kentaro Kurashina; Hisashi Hatanaka; Masashi Bando; Shoji Ohno; Yuichi Ishikawa; Hiroyuki Aburatani; Toshiro Niki; Yasunori Sohara; Yukihiko Sugiyama; Hiroyuki Mano
Journal:  Nature       Date:  2007-07-11       Impact factor: 49.962

Review 8.  Management of non-small-cell lung cancer: recent developments.

Authors:  Martin Reck; David F Heigener; Tony Mok; Jean-Charles Soria; Klaus F Rabe
Journal:  Lancet       Date:  2013-08-24       Impact factor: 79.321

9.  Clinical significance of EML4-ALK fusion gene and association with EGFR and KRAS gene mutations in 208 Chinese patients with non-small cell lung cancer.

Authors:  Ying Li; Yongwen Li; Tong Yang; Sen Wei; Jing Wang; Min Wang; Yuli Wang; Qinghua Zhou; Hongyu Liu; Jun Chen
Journal:  PLoS One       Date:  2013-01-14       Impact factor: 3.240

Review 10.  SOCS, inflammation, and cancer.

Authors:  Kyoko Inagaki-Ohara; Taisuke Kondo; Minako Ito; Akihiko Yoshimura
Journal:  JAKSTAT       Date:  2013-08-15
View more

北京卡尤迪生物科技股份有限公司 © 2022-2023.