| Literature DB >> 23371378 |
S D Süssmuth1, J Brettschneider, A Spreer, M Wick, S Jesse, J Lewerenz, M Otto, H Tumani.
Abstract
Cerebrospinal fluid (CSF) analysis is of utmost importance to establish an early diagnosis of central nervous system (CNS) infections and to start appropriate therapy. The CSF white cell count, lactate concentration and total protein levels are usually available very quickly even from non-specialized laboratories and the combination of these parameters often provides sufficient information for decision-making in emergency cases. It is, however, not always possible to identify the underlying infective agent despite further CSF analyses, such as bacterial and fungal staining, evaluation of the blood-CSF barrier function, intrathecal immunoglobulin synthesis and oligoclonal IgG bands. Therefore, close communication between the laboratory and the clinician is an important prerequisite to specify additional pathogen-related diagnostic measures for successful confirmation of the diagnosis.Entities:
Mesh:
Substances:
Year: 2013 PMID: 23371378 PMCID: PMC7095826 DOI: 10.1007/s00115-012-3701-8
Source DB: PubMed Journal: Nervenarzt ISSN: 0028-2804 Impact factor: 1.214
| Stufe | Parameter | Fragestellung/Information |
|---|---|---|
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| Beschaffenheit, Zellzahl, Gesamtprotein, Laktat | Akute Entzündung, bakteriell/viral, Schrankenstörung |
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| Quotienten von Albumin, IgG, IgA, IgM + oligoklonale Banden | Entzündung, Schrankenstörung |
| Differenzialzellbild | Differenzierung von Entzündung, Blutung und Tumorbefall | |
| Gramfärbung + Kultur | Erregernachweis (Bakterien, Pilze) | |
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| Erregerspezifische Antikörper | Infektion vs. Autoimmunerkrankung |
| ZNS-eigene Proteine | Neurodegeneration | |
| Immunzytologie, Tumormarker | Tumor: Bestätigung + Typisierung | |
| Antigennachweis | Erregernachweis bzw. Bestätigung (v. a. Bakterien, Pilze) | |
| PCR | Goldstandard für Viren, ergänzend bei Tbc, anderen Bakterien und Parasitosena |
az. B. bei negativen Befunden aus Färbung und Antigennachweis.
Ig Immunglobulin, PCR „polymerase chain reaction“, Tbc Tuberkulose, ZNS Zentralnervensystem.
| Parameter | Methode | Normalbefund |
|---|---|---|
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| Inspektion | Klar, farblos |
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| Manuell, Lichtmikroskopie, Fuchs-Rosenthal-Kammer | < 5 |
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| Manuell, Lichtmikroskopie, Pappenheim-Färbung | Lymphomonozytär (Verhältnis 2:1 bis 3:1) |
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| Nephelometrie | < 500 |
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| Enzymatisch | < 2,1–2,4 |
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| Enzymatisch | > 0,50 |
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| Nephelometrie | < 5–10 (altersabhängig); Formel für obere Grenze: 4 + Alter/15 |
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| Nephelometrie | Nicht nachweisbar |
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| Gramfärbung, Kultur, Mikroskopie, PCR, Antigennachweis | Nicht nachweisbar |
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| Enzymimmunoassays | Nicht nachweisbar |
Ig Immunglobulin, L/S Liquor-Serum-Quotient, ZNS Zentralnervensystem.

| Liquor | Eitrige Meningitis/Meningoenzephalitis | Virale Meningitis/Meningoenzephalitis | Neuroborreliose | Tuberkulöse Meningitis |
|---|---|---|---|---|
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| Trüb | Klar | Klar | Meist trüb |
|
| > 1000 | < 1000 | < 1000 | < 1000 |
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| Granulozytär | Lymphozytär | Lymphozytär | Gemischt |
|
| > 1000 | < 1000 | > 1000 | > 1000 |
|
| > 3,5 | < 3,5 | < 3,5 | > 3,5 |
|
| < 0,50 | > 0,50 | > 0,50 | < 0,30 |
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| > 20 | < 20 | > 20 | > 20 |
L/S Liquor-Serum-Quotient.



| Erreger | Besonderheiten | Diagnostische Methoden |
|---|---|---|
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| Mikroskopie (gramnegative Diplokokken), Kultur, Antigenschnelltest | |
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| Mikroskopie (grampositive Diplokokken), Kultur, Antigenschnelltest | |
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| Selten seit Impfung | Mikroskopie (gramnegative Stäbchen), Kultur, Antigenschnelltest |
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| Serologie | |
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| Abgelaufene Syphilis | Serologie |
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| Kultur | |
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| Kultur | |
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| Mikroskopie (grampositive Stäbchen), Kultur, Antigenschnelltest | |
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| Mikroskopie (Ziehl-Neelsen-Färbung), Kultur, PCR | |
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| Einnahme von Rohmilchprodukten | Kultur, PCR, Serologie |
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| Verzehr von rohem Fleisch oder unzureichend erhitzten kontaminierten Milchprodukten | Mikroskopie, Kultur |
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| Tierkontakt oder Inhalation von kontaminiertem Staub | Serologie |
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| Kontakt mit kontaminiertem Wasser oder Tierexkrementen | Mikroskopie, Kultur, Serologie |
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| Nach Tracheobronchitis, bei Kindern und Jugendlichen | Serologie |
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| (M. Whipple) Gastrointestinale Symptome | Mikroskopie, PCR |
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| Enteroviren (Echovirus, Coxsackievirus A, B) | PCR, Serologie | |
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| PCR, Serologie | |
| FSME-Virus | Zeckenexposition | Serologie |
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| PCR, Serologie | |
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| Epstein-Barr Virus | Lymphadenitis, Splenomegalie | PCR, Serologie |
| Zytomegalievirus | PCR, Serologie | |
| JC-Virus | Progressive multifokale Leukoenzephalopathie | PCR, Serologie |
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| Adenovirus | Atemnotsyndrom des Erwachsenen, ARDS | PCR, Kultur, Antigennachweis |
| Mumpsvirus | Parotitis | Serologie |
| Poliovirus | Nach Prodromalstadium mit Infektzeichen plötzliche schlaffe Paresen | PCR |
| Rabiesvirus | Kontakt mit infizierten Tieren | PCR |
| Rötelnvirus | Kein Impfschutz, Kontakt mit erkrankten Personen | Serologie |
| Hantaviren (Puumala, Hantaan, Dobrava) | Kontakt mit infizierten Nagern | PCR, Antigennachweis, Serologie |
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| Antigennachweis im Liquor | |
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| Antigennachweis im Liquor, Tuschefärbung, Kultur | |
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| PCR im Liquor, Serologie | |
a ARDS „acute respiratory distress syndrome“, FSME Frühsommermeningoenzephalitis, PCR „polymerase chain reaction“.
| Untersuchung | Zu erwartende typische Befunde |
|---|---|
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| Mikroskopischer oder kultureller Erregernachweis |
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| Leukozytose mit Linksverschiebung und toxischer Granulation |
| C-reaktives Protein und Prokalzitonin deutlich erhöht | |
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| Bei unbehandelten, immunkompetenten Patienten: |
| – Eitrige Pleozytose | |
| – Ausgeprägte Schrankenstörung | |
| – Anaerober Glukosestoffwechsel (QGlukose < 0,50, L-Laktat > 3,5 mmol/L) |
| Untersuchung | Befunde |
|---|---|
|
| Lymphozytäre Pleozytose |
| Mittelgradige Schrankenfunktionsstörung | |
| Intrathekale humorale Immunreaktion mit IgM-Prädominanz (IgM > IgG > IgA) und oligoklonale Banden | |
| Borrelienspezifische IgG- und IgM-Antikörper mit intrathekaler Synthese sind diagnosesichernd (s. | |
|
| CXCL13 |
Ig Immunglobulin.
| Untersuchung | Befunde |
|---|---|
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| Initial gemischtzellige, später lymphozytäre Pleozytose, schwergradige Schrankendysfunktion |
| Intathekale humorale Immunreaktion mit IgA-Prädominanz (IgA > IgG > IgM), oligoklonale Banden | |
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| Ziehl-Neelsen-Färbung: Erregerdirektnachweis (Sensitivität im Liquor jedoch nur 5–30%) |
| Kultureller Erregernachweis | |
| PCR |
Ig Immunglobulin, PCR „polymerase chain reaction“.
| Pleozytose (in der Ausprägung abhängig vom Grad der Immunschwäche); oft lymphomonozytär, initial auch granulozytäre Reaktionen möglich |
| Schrankenstörung (Liquoreiweiß↑, Albuminquotient↑) in ca. 75% aller Fälle |
| Intrathekale Immunglobulinsynthese, auch IgA oder IgM in > 50% der Fälle |
| Virusinfektionen: PCR in den ersten Tagen in > 50% positiv, dann Virusantikörperindex > > 50% positiv |
Ig Immunglobulin, PCR „polymerase chain reaction“.
| Erkrankung | Typischer Liquorbefund | Anmerkungen |
|---|---|---|
| Tumoren des ZNS und der Meningen | Häufig Pleozytose sehr variabler Ausprägung, oft Laktat und/oder Albuminquotient erhöht | Zellzahl kann normal sein! Zytopräparat kann Malignitätszeichen zeigen (ggf. wiederholte Untersuchungen). Isolierte IgM-Synthese kann bei Lymphom auftreten. CEA erhöht bei Karzinomen, β2-Mikroglobulin erhöht bei Lymphomen |
| Subarachnoidalblutung | Massenhaft Erythrozyten, durch meningeale Entzündungsreaktion Leukozyten bis zu 500/µl, initial v. a. Granulozyten, nach 12 h zunehmend Makrophagen | Siderinhaltige Makrophagen bis zu 6 Monate nach Subarachnoidalblutung nachweisbar |
| Multiple Sklerose | Lymphomonozytäre Pleozytose < 30/µl, keine bzw. milde Schrankenstörung, normales Laktat, oligoklonales IgG, positive MRZ-Reaktion | Zellzahl ≥ 50/µl deutet auf andere (ggf. infektiöse) Ursache hin |
| Akute demyelinisierende Enzephalomyelitis | Lymphomonozytäre Pleozytose > 50/µl möglich, oligoklonales IgG fakultativ, sonst wie MS | MRZ i. d. R. negativ |
| Neurosarkoidose | Lymphomonozytöre Pleozytose 10–200/µl möglich, keine bzw. milde Schrankenstörung | Sämtliche Routineparameter können verändert sein, sIL2-R im Liquor erhöht [ |
| Systemische Vaskulitiden: ZNS-Lupus-erythematodes und Morbus Behçet | Mononukleäre bzw. granulozytäre Pleozytose < 50/µl | Bei ZNS-Lupus-erythematodes fakultative IgG-Produktion/oligoklonales IgG |
| Medikamenteninduzierte aseptische Meningitis | Überwiegend granulozytäre Pleozytose bis mehrere 1000/µl möglich | Ausschlussdiagnose! Typische Medikamente: Antibiotika (v. a. Trimethoprim/Sulfamethoxazol), Nichtsteroidale Antirheumatika (v. a. Ibuprofen), intravenöse Immunglobuline [ |
CEA karzinoembryonales Antigen, Ig Immunglobulin, MRZ Antikörperreaktivität gegen Masern-, Röteln-, Zoster-Viren, sIL2-R löslicher Interleukin 2-Rezeptor, ZNS Zentralnervensystem.